VOL. 12, No. 3 - lankesteriana.org

ISSN 1409-3871 

VOL. 12, No. 3 December, 2012 

INTERNATIONAL JOURNAL ON ORCHIDOLOGY

The Vice-Presidency of Research 

University of Costa riCa 

is sincerely acknowledged for his support 

to the printing of this volume

ISSN 1409-3871 

VOL. 12, No. 3 DECEMBER 2012 

A new and extraordinary Cyrtochilum (Orchidaceae: Oncidiinae) 

from Colombia 

Giovanny Giraldo and StiG dalStröm 

A new Cyrtochilum (Orchidaceae: Oncidiinae) from Sierra Nevada 

de Santa Marta in Colombia 

StiG dalStröm 

Three new small-flowered Cyrtochilum species (Orchidaceae: Oncidiinae) 

from Colombia and Peru, and one new combination 

StiG dalStröm and Saul ruiz Pérez 

A well-known but previously misidentified Odontoglossum 

(Orchidaceae: Oncidiinae) from Ecuador 


Ponthieva hermiliae, a new species of Orchidaceae in the Cordillera 

Yanachaga (Oxapampa, Pasco, Peru) 

luiS valenzuela Gamarra 

Species differentiation of slipper orchids using color image analysis 

erneSto Sanz, noreen von Cramon-taubadel and david l. robertS 

Estudio de la orquideoflora de la reserva privada Chicacnab, 

Alta Verapaz, Guatemala 

edGar alfredo mó mó y edGar armando ruiz Cruz 

Index of nex taxa and combinations published in Lankesteriana, 

vol. 10–12 (2010–2012) 

Reviewers of the manuscripts submitted to Lankesteriana, vol. 10–12 

INTERNATIONAL JOURNAL ON ORCHIDOLOGY 

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InternatIonal Journal on orchIdology 

Copyright © 2012 Lankester Botanical Garden, University of Costa Rica 

Effective publication date: December 28, 2012 

Layout: Jardín Botánico Lankester. 

Cover: Odontoglossum furcatum Dalström (Ecuador. A. Hirtz 368). Photograph by S. Dalström. 

Printer: MasterLitho 

Printed copies: 500 

Printed in Costa Rica / Impreso en Costa Rica 

R Lankesteriana / International Journal on Orchidology 

No. 1 (2001)-- . -- San José, Costa Rica: Editorial 

Universidad de Costa Rica, 2001-v. 

ISSN-1409-3871 

1. Botánica - Publicaciones periódicas, 2. Publicaciones 

periódicas costarricenses

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Originally devoted to the publication of articles on general botany, with special attention to epiphytic 

plants and orchid systematics, ecology, evolution and physiology, along with book reviews and conferences 

on these subjects, since 2007 lankeSteriana focused exclusively on scientific papers on orchidology. 

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and it is distributed to more than 350 libraries and institutions worldwide. 

lankeSteriana is indexed by BioSiS, Latindex, Scirus, and Wzb, it is included in the databases of E-journals, 

Ebookbrowse, Fao Online Catalogues, CiteBank, Mendeley, WorldCat, Core Electronic Journals Library, and 

Biodiveristy Heritage Library, and in the electronic resources of the Columbia University, the University of 

Florida, the University of Hamburg, and the Smithsonian Institution, among others. 

In order to increase visibility of the articles published in lankeSteriana, the journal maintains since 2009 a web 

page with downloadable contents. Since November, 2011, the journal has a new and improved interface of at 

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by the University are licensed under the Creative Commons copyright. Downloading lankeSteriana is completely 

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The editors

The Global Orchid Taxonomic Network at a click 

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Now with a new user interface, the online database on taxonomic information by Lankester Botanical Garden 

includes more than 7,000 orchid names, completely cross-referenced and with evaluated synonymies. 

The electronic file on each one of the names accepted by the taxonomists at the research center includes free, immediately 

downloadable protologues, type images, illustrations of the original materials, historical and modern 

illustrations, photographs, pertinent literature and, when available, digital images of species pollinaria. 

An index (under the button “List of species”) allows the users to search for any published name, independently 

if it is accepted or not by the taxonomic compilers. Synonyms are linked to their accepted name, 

where additional materials (including images) are available for download. 

Hundreds of new species names and documents (mostly protologues), images (including high-res files), publications 

and other materials relative to orchid systematics, distribution and history are added to the database on 

a monthly basis (new entries can be searched by clicking on the “New records” button). 

Since March, 2012, new pages are devoted to the orchid species recorded in the rich system of national parks 

and other protected areas in Costa Rica (“National Parks” button), updated checklists of the orchid floras of 

Central American countries (“Floras” button) and to interesting aspects of orchid history. 

Under the button “Collectable plates”, the research staff at Lankester Botanical Garden makes available to the 

public the most detailed images of orchids from the collections at the Center, organized in a series of collectable 

plates that can be downloaded for free. New ones are added each week. 

Supported by the University of Costa Rica and the Darwin Initiative, EpidEndra, The Global Orchid Taxonomic 

Network counts with the collaboration of respected taxonomists and leading botanical institutions worldwide.

LANKESTERIANA 12(3): 137—142. 2012. 

A NEW AND EXTRAORDINARY CYRTOCHILUM (ORCHIDACEAE: 

ONCIDIINAE) FROM COLOMBIA 

Giovanny Giraldo 1 & StiG dalStröm 2,3 

1 Department of Botany, University of Wisconsin-Madison, 430 Lincoln Drive, 

Madison WI 53706-1381, U.S.A. 

2 2304 Ringling Boulevard, unit 119, Sarasota FL 34237, U.S.A. 

Lankester Botanical Garden, University of Costa Rica, Cartago, Costa Rica 

and National Biodiversity Centre, Serbithang, Bhutan 

3 Corresponding author: stigdalstrom@juno.com 

abStraCt. A new species of Cyrtochilum from Antioquia, Colombia, is described and illustrated, and compared 

with the similar Ecuadorian C. cryptocopis and C. trifurcatum, but differs in having a different ventral structure 

and much narrower wings of the column, and also by the much broader frontlobe of the lip. 

key wordS: Cyrtochilum, Colombia, Oncidiinae, new species, taxonomy 

Despite two centuries of intense hunting for orchids 

in the Colombian wilderness, as well as extensive 

deforestation and urbanization, new and extraordinary 

species are found rather frequently. New and attractive 

species of Phragmipedium Rolfe have recently been 

described, and large numbers of showy pleurothallids 

in genera such as Dracula Luer, and Masdevallia Ruiz 

& Pav., as well as a plethora of other types of orchids 

never seem to stop appearing in the botanical literature. 

This paper describes a new Cyrtochilum Kunth, from 

the western cordillera where it was initially discovered 

by one of the authors (GG) as his attention was caught 

by the dancing brown and yellow flowers on the long 

pendant inflorescence while walking through the 

national preserve. 

Cyrtochilum betancurii G.Giraldo & Dalström sp. 

nov. 

TYPE: Colombia, Antioquia, Mun. Urrao. Parque 

Nacional Natural las Orquídeas, in cloud forest at 

1600-1800 m elevation. February 2, 2011. J. Betancur 

14882 (holotype, COL). Fig. 1—3. 

diaGnoSiS: Cyrtochilum betancurii is most similar to 

the Ecuadorian C. cryptocopis (Rchb.f.) Kraenzl. (Fig. 

4), and C. trifurcatum (Lindl.) Kraenzl. (Fig. 5), but 

has a different ventral structure and much narrower 

wings of the column, and also by the much broader 

frontlobe of the lip. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs distant on a 

creeping, bracteate rhizome, oblong ovoid and slightly 

compressed, ca. 4.3 × 2.1 cm, unifoliate or bifoliate, 

surrounded basally by four to six distichous foliaceous 

sheaths. Leaves subpetiolate, conduplicate, obovate, 

acute, to ca. 40.0–50.0 × 5.0–6.0 cm. Inflorescence 

axillary from the uppermost sheath, erect then wiry, 

straight to loosely flexuous to ca. 2.80 m long panicle, 

with a basal longer branch, and then several widely 

spaced, short, few-flowered side-branches, carrying 

in total 16 to 18 flowers (although larger specimens 

with more flowers are likely to exist). Floral bracts 

appressed, scale like, ca. 1.0 × 0.6–0.7 cm. Pedicel 

with ovary ca. 4.5 cm long. Flowers stellate and showy; 

dorsal sepal dark brown with yellow border, basally 

auriculate, spathulate, broadly cordate, distinctly 

undulate, obtuse to acute and slightly oblique, 3.6 × 

2.4 cm; lateral sepals dark brown, basally auriculate 

and connate for 6.0–8.0 mm, then spreading, elongate 

and narrowly spathulate, then cordate, slightly 

undulate, obtuse to rounded and slightly oblique, ca. 

7.4 × 2.3 cm; petals dark brown with a yellow border, 

broadly linear and shortly spathulate, then truncate 

to cordate, distinctly undulate, obtuse to acute and 

slightly oblique, ca. 2.5 × 1.8 cm; lip dark brown with 

yellow border and callus, rigidly attached to the base 

of the column through a narrow and terete claw, then 

truncate, distinctly pandurate with spreading, slightly 

oblique, broadly auriculate, slightly serrate lateral

138 LANKESTERIANA 

fiGure 1. Cyrtochilum betancurii. A. Plant habit. B. Flower, front view. C. Lip, ventral view. D. Column and lip, lateral 

view. E. Flower dissected. Drawn from holotype by Sarah Friedrich. 

lobes, and a ca. 4 mm broad isthmus below the widely 

spreading and broadly dolabriform, obtuse to acute, 

emarginate, revolute frontlobe, 1.8 × 1.8 cm; callus 

complex and fleshy, emerging near the base of the 

lateral lobes and extending for ca. 5 mm, consisting 

of an erect, table-like, tricarinate structure with several 

lateral, spreading denticles, with additional series of 

spreading tubercles or denticles on each side, and an 

LANKESTERIANA 12(3), December 2012. © Universidad de Costa Rica, 2012. 

apical, central, longitudinal and triangular keel, with 

spreading, dorsally flattened, fleshy, lateral keels; 

column purplish brown, stout, erect in a ca. 90° angle 

from the base of the lip then slightly curved towards 

the lip near the apex, with a complex, protruding, 

terete, trilobate concavity on the ventral side below 

the stigma, and with a pair of clavate to obliquely and 

narrowly deltoid, or bilobed, spreading blackish purple

Giraldo and dalStröm — A new Cyrtochilum from Colombia 139 

A B 

fiGure 2. Cyrtochilum betancurii, flower in frontal (A) and lateral (B) views. Photo by G. Giraldo. 

fiGure 3. Cyrtochilum betancurii, detail of the column and 

lip, lateral view. Photo by G. Giraldo. 

wings on each side below the stigma; anthercap yellow 

and purplish, campanulate; pollinarium not seen. 

diStribution: Colombia, Antioquia, Mun. Urrao. 

Parque Nacional Natural las Orquídeas on the western 

cordillera. 

ePonymy: Named in honor of Julio Betancur, leader 

of the expedition to Parque Nacional Las Orquideas, 

and a renowned Colombian botanist with great 

experience and passion for tropical plants that has 

positively influenced a new generation of Colombian 

botanists. 

Cyrtochilum betancurii is only known from the 

type collection in the cloud forests of the western 

cordillera in Colombia. Because of its restricted 

location the authors recommend its protection until 

LANKESTERIANA 12(3), December 2012. © Universidad de Costa Rica, 2012.


fiGure 4. Cyrtochilum cryptocopis. A. Column and lip, lateral view. B. Column, lateral and frontal views. C. Column, ventral 

view. D. Anther cap and pollinarium. E. Lip, spread. F. Flower dissected. Drawn from Dalström 2800 (SEL) by Stig Dalström. 


Giraldo and dalStröm — A new Cyrtochilum from Colombia 141 

fiGure 5. Cyrtochilum trifurcatum. A. Column and lip lateral view. B. Column lateral view. C. Column ventral view. D. 

Anther cap and pollinarium. E. Lip, spread. F. Flower dissected. Drawn from Dodson 14034 (SEL) by Stig Dalström. 



more information about the species distribution can be 

gathered. 

aCknowledGmentS. The authors wish to thank the NSF 

funded project; Flora of Las Orquideas National Park (DEB 

1020623 to Pedraza), for funding the fieldwork and making 

specimens available, and also the New York Botanical 

Garden, Universidad Nacional de Colombia and Unidad 

de Parques Nacionales Naturales de Colombia. In addition 

we especially thank Hector Velásquez and the park rangers 

for assisting in the logistics and successfully executing the 

field trip. We are very thankful to Sarah Friedrich, Media 

Specialist in the botany department at UW-Madison for 


the preparation of the type illustration. The first author also 

thanks the botanists Julio Betancur, Paola Pedraza, Maríaa 

Fernanda González, and the photographer Fredy Gómez 

for their company and support, making the field trip an 

unforgettable and enriching experience. 

literature Cited 

Dalström, S. 2010. Cyrtochilum Kunth, in Flora of Ecuador 

225(3): Orchidaceae; genera Cyrtochiloides–Epibator, 

by Calaway H. Dodson and Carl A. Luer. Department 

of Plant and Environmental Sciences, University of 

Gothenburg, Sweden.


A NEW CYRTOCHILUM (ORCHIDACEAE: ONCIDIINAE) FROM SIERRA 

NEVADA DE SANTA MARTA IN COLOMBIA 


2304 Ringling Boulevard, unit 119, Sarasota FL 34237, U.S.A. 



stigdalstrom@juno.com 

abStraCt. A new species of Cyrtochilum from the isolated region of Sierra Nevada de Santa Marta in Colombia 

is described and illustrated, and compared with similar species. It is distinguished from other Cyrtochilum 

species by the violet color of the sepals and petals, in combination with the pandurate lip lamina with a large 

and protruding nose-like central callus keel. 

key wordS: Cyrtochilum, Orchidaceae, Oncidiinae, new species, Colombia, Santa Marta, Sierra Nevada, 

taxonomy 

During a past visit to the Marie Selby Botanical 

Gardens (MSBG) in Sarasota, Florida, Mariano Ospina 

brought a large number of dried orchid specimens for 

identification purposes, mainly from the National 

Herbarium of Colombia (COL) in Bogotá. The 

herbarium batch consisted of species that today are 

placed in many different genera, including Cyrtochilum 

Kunth, Erycina Lindl., Heteranthocidium Szlach., 

Mytnik & Romowicz, Oncidium Sw., Otoglossum 

(Schltr.) Garay & Dunst., and Trichocentrum Poepp. 

& Endl. (the names of the genera vary depending on 

which taxonomist is consulted). During this project, 

which was a collaboration between Ospina and 

MSBG, I had the opportunity to analyze the material 

and encountered a Cyrtochilum species that was 

unknown to me. A drawing was made at the time of 

this unusual looking and most certainly quite attractive 

species. Eventually it became clear that it represented 

an undescribed species, which is described herein. 

Cyrtochilum violaceum Dalström, sp. nov. 

TYPE: Colombia, Magdalena, Sierra Nevada de Sta. 

Marta, Transecto del Alto Rio Buritaca, Cuchilla at 

2900 m, Lev. 29. Proyecto Desarrollo, 5 August 1977; 

R. Jaramillo M. et al. 5366 (holotype, COL). fiG. 1. 

diaGnoSiS: Cyrtochilum violaceum is distinguished 

from other Cyrtochilum species by the violet color of 

the sepals and petals, in combination with a pandurate 

lip lamina with a large and protruding nose-like central 

callus keel, which is similar to the not closely related 

Oncidium mantense Dodson & R.Estrada. Cyrtochilum 

violaceum differs from the similarly colored and 

closely related Cyrtochilum undulatum Kunth [syn: C. 

orgyale (Rchb.f. & Warsc.) Kraenzl.] by the pandurate 

lip lamina, the cleft and distinct frontal angles of the 

stout column, and the pair of digitate or narrowly 

clavate wings on each side below the stigmatic surface, 

versus a triangular lip lamina, and a more slender and 

sigmoid column of the latter species with short angular 

knobs only, or without wings altogether. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs caespitose to 

creeping on a bracteate rhizome, ovoid, ca. 5 × 2 

cm, bifoliate, surrounded basally by 7 to 8 distichous 

sheaths, the uppermost foliaceous. Leaves subpetiolate, 

conduplicate, elliptic to slightly obovate, narrowly 

acute, ca. 16–17 × 2 cm. Inflorescence axillary from 

the uppermost sheath, an erect to arching, to ca. 70 

cm long loosely flexuous panicle, with widely spaced 

3 to 4 flexuous, 2– to 4–flowered side-branches (up 

to 6 or more flowers on 7 branches have been noted 

on an additional specimen). Floral bracts large and 

conspicous, involute and cucullate, ca. 10–15 mm 

long. Pedicel with ovary 20–25 mm long. Flowers 

apparently open and stellate; dorsal sepal violet, 

shortly spathulate, then truncate and broadly ovate 

to elliptic laminate, obtuse, slightly undulate, ca.


fiGure 1. Cyrtochilum violaceum. A. Plant habit. B. Column and lip lateral view. C. Lip dorsal view. D. Column lateral view. 

E. Pollinia and stipe. F. Flower dissected. Drawn from holotype by Stig Dalström. 


25 × 18 mm; lateral sepals similar in color, slightly 

obliquely spathulate, then obliquely cordate, broadly 

and weakly pandurate laminate, obtuse, ca. 25 × 15 

mm; petals similar in color, almost sessile, truncate to 

cordate, then broadly ovate and rounded obtuse with 

a canaliculate acute, almost folded apex, ca. 20 × 13 

mm; lip rigidly attached to the base of the column 

and angled downwards, truncate to cordate, pandurate 

with obtuse triangular lateral lobes, and a rounded 

and slightly concave, weakly bilobed to minutely 

apiculate frontlobe, ca. 10 × 8 mm; callus yellow, of 

a fleshy denticulate structure emerging from the base 

and extending to almost half the length of the lamina, 

with several spreading lower lateral denticles and a 

dominating, projecting, laterally compressed, noselike 

central keel; anthercap not seen; pollinarium of 

two globose cleft pollinia on a ca. 2 mm long and 

narrow stipe on a pulvinate viscidium. 

ParatyPe: Colombia, Magdalena, Sierra Nevada de 

Sta. Marta, Transecto del Alto Rio Buritaca, Cuchilla 

dalStröm — A new Cyrtochilum from Santa Marta, Colombia 145 

at 2700 m, Lev. 27. Proyecto Desarrollo, 2 August 

1977, R. Jaramillo M. et al. 5352 (COL). 

diStribution: Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. 

etymoloGy: Named in reference to the main color of 

the flower. 

Cyrtochilum violaceum is so far only reported 

from the Sierra Nevada de Santa Marta region in 

northern Colombia. The poorly explored forests of 

this isolated mountain are likely to contain a large 

number of endemic species, both in the fauna and 

the flora. Several attractive orchid species have been 

described from there that are found nowhere else, such 

as Odontoglossum naevium Lindl., and O. nevadense. 

Rchb.f. 

aCknowledGment. I wish to thank Mariano Ospina for 

bringing the specimens to the US, and thus making them 

available to the author. I also wish to thank Wesley Higgins 

for reviewing and commenting on the manuscript. 


LANKESTERIANA


THREE NEW SMALL-FLOWERED CYRTOCHILUM SPECIES 

(ORCHIDACEAE: ONCIDIINAE) FROM COLOMBIA AND PERU, 

AND ONE NEW COMBINATION 

StiG dalStröm 1,3 & Saul ruíz Pérez 2 

1 2304 Ringling Boulevard, unit 119, Sarasota FL 34237, U.S.A. 



2 Allamanda 142, Surco, Lima 33, Peru 

3 Corresponding author: stigdalstrom@juno.com 

abStraCt. Three new small-flowered Cyrtochilum species from Colombia and Peru are here described, illustrated 

and compared with similar species, and with one new taxonomic combination. The first species differs from all 

other Cyrtochilum species by the curved horn-like structures on the lip callus. The second species differs from 

its most similar relative by a larger flower with a different column structure. The third species is distinguished 

by the three horn-like knobs at the apex of the column. 

key wordS: Cyrtochilum, Orchidaceae, Oncidiinae, new combination, new species, Colombia, Peru, taxonomy 

The Andean orchid genus Cyrtochilum Kunth, is 

rapidly growing in number of species as previously 

unexplored areas are targeted for botanical inventories, 

sometimes into areas that have been, or still are, 

considered “dangerous” by governments for various 

reasons. In other cases, new species are found in 

herbaria where they have been laying undetermined in 

peaceful anonymity for years. This article presents two 

new species from the Cusco and Ayacucho regions in 

Peru, which has been terrorized by the Maoist guerilla 

known as “Sendero Luminoso” (Shining Path) for 

many years. Today smaller factions of this violent group 

apparently still control remote bases in the mountains 

between the city of Ayacucho and the Apurimac river to 

the east. What is left of the terrorist-like organization is 

suspected to work as mercenaries for the illegal cocaine 

drug industry, also established in the region. In other 

words, this particular area is best given a wide berth! 

The third species described in this article is also from 

an area that until very recently was considered very 

dangerous to visit due to the activities of the FARC 

guerilla in Colombia. Great work has been done by the 

Colombian government, however, to clear most of the 

country from the dangers caused by this group. 

Cyrtochilum corniculatum Dalström, sp. nov. 

TYPE: Colombia. Antioquia, Yarumal, Km 87 along 

road Medellín-Yarumal, Llanos de Cuiba [Cuiva], 2750 

m, 12 Sep. 1984, C. Dodson et al. 15264 (holotype, 

RPSC; isotype, MO). fiG. 1. 

diaGnoSiS: Cyrtochilum corniculatum differs from 

all other small-flowered Cyrtochilum species by 

the combination of a column with two large ventral, 

lamellate angles, and a cordate, cupulate lip with a 

callus of two basal, falcate corniculate denticles. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs apparently 

caespitose, subtended basally by 8 to 10 distichous 

sheaths, the uppermost foliaceous, ovoid, unifoliate or 

bifoliate, 8.0–9.0 × 2.5–3.0 cm. Leaves subpetiolate, 

conduplicate, obovate, acuminate, ca. 36.0–40.0 × 

2.8–3.0 cm. Inflorescences multiple, axillary from 

the bases of the uppermost sheaths, wiry to ca. 1.5 m 

or longer panicles, with widely spaced, fractiflex or 

flexuous, 3 to 8-flowered side-branches. Floral bracts 

appressed, scale-like, 5.0–20.0 mm long. Pedicel 

with ovary 7.0–15.0 mm long. Flower stellate; dorsal 

sepal pinkish brown, shortly unguiculate to cuneate, 

elliptic to obovate laminate, obtuse to acute, 10.0–15.0 

× 6.0–7.0 mm; lateral sepals similar in color, shortly 

unguiculate to narrowly cuneate, obovate laminate, 

acute, 12.0–13.0 × 5.0–6.0 mm; petals similar in color, 

unguiculate, slightly obliquely ovate laminate, obtuse 

to acute, 10.0–12.0 × 5.0 mm; lip similar in color,


fiGure 1. Cyrtochilum corniculatum. A. Plant habit. B. Flower lateral view. C. Column, lateral and ventral views, and 

pollinarium. D. Flower dissected. Drawn from holotype by Stig Dalström. 


dalStröm and ruíz Pérez — Three new species of Cyrtochilum from Colombia and Peru 149 

rigidly fused to the base of the column and angled 

downwards in a ca. 135° angle, cordate to weakly 

trilobate, with spreading, rounded side lobes, and a 

cupulate involute, emarginate front lobe, ca. 10.0 × 5.0 

mm; callus yellow, of a low basal swelling with a pair 

of forward projecting, falcate corniculate denticles; 

column stout, erect, with a pair of ventral, forward 

projecting, laterally flattened and slightly incurved 

angles, and a truncate apex, ca. 5.0 mm long; anther 

cap not seen; pollinarium of two globose, cleft, or 

folded, pollinia on a minute ca. 0.7 mm long stipe, on 

a 0.5 mm long, pulvinate viscidium. 

ParatyPe: Colombia. Cundinamarca (?), “Bogota”, 

“Falkenberg” s.n.; the quoted information is marked 

with question marks on the herbarium sheet (W 15932). 

diStribution: Recorded from the Llanos de Cuiva area 

in the central cordillera of the Colombian Andes, at an 

elevation of 2750 m, and once (questionable) from the 

eastern cordillera, possibly somewhere near Bogota. 

etymoloGy: Named in reference to the falcate, hornlike 

denticles of the lip callus. 

Cyrtochilum corniculatum is only known from 

two collections, which is remarkable since it comes 

from rather heavily collected regions. The habitat is 

epiphytic in patches of upper elevation cloud forest, 

in rather deforested areas. The insignificant pinkish 

brown flowers on long and wiry inflorescences may 

have contributed to the plant not being observed or 

appreciated by previous collectors. 

Cyrtochilum russellianum Dalström & Ruíz-Pérez, 

sp. nov. 

TYPE: Peru. Ayacucho, La Mar, Aina, Calicanto, 

humid cloudforest at 2500-2600 m, collected by S. 

Ruíz, J. Valer and S. Dalström of Peruflora, 5 Dec. 

2010, S. Dalström 3415 (holotype, USM). fiG. 2. 

diaGnoSiS: Cyrtochilum russellianum is most similar 

to the sympatric Cyrtochilum carinatum (Königer 

& Deburghgr.) Dalström, comb. nov. (Basionym: 

Trigonochilum carinatum Königer & Deburghgr., 

Arcula 19: 430. 2010), but differs primarily in having a 

larger flower without the well-developed dorsal column 

ridge, which ends in a distinct apical knob, typical for 

C. carinatum. It differs from the also sympatric C. 

sharoniae Dalström, by the light rose flowers versus 

dark blackish purple flowers of the latter species. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs caespitose, ovoid, 

unifoliate or bifoliate, surrounded basally by 

distichous, foliaceous sheaths. Leaves subpetiolate, 

conduplicate (no vegetative parts exist in the type 

specimen. The relatively large type plant was examined 

but unfortunately not measured). Inflorescence axillary 

from the uppermost sheaths, erect, then more or less 

wiry, to ca. 1.8–2.0 m long panicle with widely spaced 

4- to 6-flowered flexuous side-branches. Floral bracts 

appressed, scale-like ca. 3.0–5.0 mm long. Pedicel with 

ovary triangular in cross-section and slightly winged, 

ca. 25 mm long. Flower stellate with more or less 

deflexed segments; dorsal sepal white almost covered 

by pale rose blotches, spathulate, elliptic laminate, 

acute, slightly undulate, 12.0 × 5.0 mm; lateral sepals 

similar in color, spathulate, ovate laminate, obtuse, 

slightly oblique ca. 12.0 × 4.0 mm; petals similar in 

color, shortly spathulate, obliquely obovate to rotund 

laminate, acuminate, 10.0 × 6.0 mm; lip whitish to 

pale yellowish with pale brown to purple spots, rigidly 

attached to the base of the column, hastate, triangular 

with distinctly angled side lobes and an obtuse slightly 

revolute, recurved and apically convolute front lobe, 

ca. 10.0 × 7.0 mm; callus pale yellowish with brown 

spots, of a fleshy, multidentate structure, extending 

from the base to about half the length of the lamina, 

with spreading, rounded knobs, and ending in a central, 

slightly larger rounded denticle, with two lateral, 

spreading, short, knoblike denticles; column lilac, 

erect, almost straight to slightly sigmoid, with a basal, 

ventral knoblike swelling, and then with two spreading 

ventral angles below the stigmatic surface, ca. 4.5–5.0 

mm long; anther cap red, globular; pollinarium of two 

elongate pyriform, cleft, or folded pollinia on a minute 

linear stipe, on a micro-minute pulvinate viscidium. 

diStribution: Cyrtochilum russellianum is only known 

from a single locality; the upper elevation cloudforests 

near the village of Calicanto, east of Ayacucho, Peru, 

in the centre of the former terrorist controlled area, at 

ca 2500 to 2600 m, where it is protected by some very 

suspicious and probably battle hardened villagers. 

ePonymy: Named in honor and gratitude of Russell F. 

Stephens Jr., of Sarasota, Florida, who has supported 



fiGure 2. Cyrtochilum russellianum. A. Flower lateral and frontal views. B. Column lateral and ventral views. C. Anther cap 

and pollinarium. D. Flower dissected. Drawn from holotype by Stig Dalström. 



orchid research by establishing the Friends of Orchid 

Research Fund (with a particular interest in the orchid 

flora of Bhutan and Peru), administrated by the 

Community Foundation of Sarasota County. 

Cyrtochilum russellianum is similar to and 

flowers simultaneously with the sympatric and pale 

pink-flowered C. carinatum, but differs in the larger 

flower without a distinct dorsal keel and apical knob 

on the column. The similarly small flowered C. 

sharoniae also grows sympatrically in the same area 

and flowers simultaneously with C. carinatum and C. 

russellianum, but differs in the dark purple to almost 

blackish flowers. All three species have lilac columns, 

a very unusual and interesting circumstance. The 

vegetative differences, however, are clear between the 

three species. The pseudobulbs in C. russellianum are 

normally green, while in C. carinatum the base of the 

pseudobulbs as well as the base of the new growths 

are dark purplish in the wild. The pseudobulbs in C. 

sharoniae are typically dark green and the leaves have 

a whitish wax-like coating, similar to some unrelated 

plants with a pendent habit, such as Euchile citrina 

(Lex.) Withner, and Masdevallia caesia Roezl. 

Cyrtochilum tricornis Dalström & Ruíz-Pérez, sp. 

nov. 

TYPE: Peru. Cusco, Quillabamba, Rio Chullapi 

Reserva, 2000—2200 m, field collected by Luis 

Valenzuela and his team from the Cusco University, 

with J. Sönnemark and S. Dalström, 9 Dec. 2002, S. 

Dalström et al. 2699 (holotype, CUZ). fiG. 3. 

diaGnoSiS: Cyrtochilum tricornis is most similar to 

C. cimiciferum (Rchb.f.) Dalström, and Cyrtochilum 

macropus (Linden & Rchb.f.) Kraenzl., but differs 

from both by the much smaller floral bracts, the 

pandurate lip lamina and the three distinct horn-like 

structures at the apex of the column. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs caespitose, ovoid, 

bifoliate, 9.0–11.0 × 1.5–2.0 cm, surrounded basally 

by 6 to 8 distichous sheaths, the uppermost foliaceous. 

Leaves subpetiolate, conduplicate, elliptic to obovate, 

narrowly acute to acuminate, 29.0–35.0 × 1.0–2.0 

cm. Inflorescence 1 or 2, axillary from the uppermost 

sheaths, erect to arching, almost straight to slightly 

flexuous apically, to ca. 130 cm long panicle, with many 

widely spaced, almost straight to slightly flexuous, 3- 

to 6-flowered side-branches. Floral bracts appressed, 

scale-like, ventrally pubescent, acute, 5.0–10.0 mm 

long. Pedicel with ovary 20.0–25.0 mm long. Flowers 

stellate with deflexed segments; dorsal sepal yellow 

with brown spots, unguiculate to spathulate, obovate to 

elliptic laminate, obtuse, weakly undulate, and slightly 

revolute, ca. 10.0 × 4.0–5.0 mm; lateral sepals similar 

in color, spathulate, narrowly and obliquely ovate to 

elliptic laminate, obtuse, 15.0 × 6.0 mm; petals similar 

in color, broadly unguiculate, broadly and slightly 

obliquely ovate, almost rotundate laminate, obtuse, ca. 

10.0 × 6.0 mm; lip similar in color, rigidly attached to 

the base of the column, basally hastate, trilobate and 

pandurate with distinct lateral angles, and a rounded, 

concave, strongly reflexed front lobe, ca. 10.0 × 6.0– 

7.0 mm; callus yellow, of a fleshy, tricarinate structure, 

emerging from the base of the lip and longitudinally 

extending for about 4.0–5.0 mm, the lateral ridges 

being shorter and ending in blunt, slightly spreading 

angles, and the central ridge ending in a slightly 

swollen, rounded knob; column basally green, then 

purplish or brownish, apically yellow, erect in a ca. 90º 

angle from the base of the lip, stout, straight, with two 

diffuse spreading, lateral angles, and one central fleshy 

keel below the stigmatic surface, and three apical 

horn-like structures, 4–5 mm long; anther cap dark 

orange to red, with a yellow dorsal stripe, campanulate 

and minutely papillose; pollinarium of two elongate 

pyriform, cleft, or folded, pollinia on a minute, less 

than 0.5 mm long broadly linear, or rectangular, stipe 

on a minute, almost triangulate, pulvinate viscidium. 

ParatyPeS: Peru. Pasco, Paucartambo, Ulcumayo, 

Anexo Yaupi, ca. 2000—2200 m, humid forest at ca 

1800—2000 m, field collected by S. Ruíz s.n., and 

flowered in cultivation at Perúflora, 26 Dec. 2011, 

S. Dalström 3493 (USM). Same area, 5 km south 

of Oxapampa, ca. 1800 m, 30-31 Jan. 1979, C. & 

J. Luer 3817, 3837 (SEL). Same area. Oxapampa, 

Chontabamba, 1200 m, 17 July 1996, J. del Castillo 

s.n., ex D. E. Bennett 7672; illustration in Icones 

Orchidacearum Peruviarum, pl. 533 (1998), as 

“Oncidium saltabundum” (No preserved specimen 

found). 

diStribution: This species is only known from 

montane areas in the departments of Pasco and Cusco 



fiGure 3. Cyrtochilum tricornis. A. Plant habit. B. Flower lateral view. C. Column lateral and ventral views, and anther cap. 

D. Pollinarium, with front and lateral views of the stipe. E. Flower dissected. Drawn from holotype by Stig Dalström. 



in central Peru where it occurs as an epiphyte in open 

and humid forests at 1200-2200 m elevation. 

etymoloGy: The name refers to the three horn-like 

structures at the apex of the column. 

Cyrtochilum macropus has in previous treatments 

been considered as a synonym of C. cimiciferum 

(Dalström, 2001), but recent examinations of additional 

field-collected material and the holotypes show that it 

should be treated as a distinct species. 


aCknowledGment. The authors wish to thank the staff 

at the Instituto Recursos Naturales (INRENA), and 

Betty Millán at the Universidad de San Marcos, Museo 

de Historia Natural, Lima, for aiding in providing the 

necessary collecting permits. We also wish to thank the staff 

at the herbaria of CUZ, MO, MOL, SEL and USM, for their 

assistance in the examinations of preserved plant specimens. 

We also thank Wesley Higgins for viewing and commenting 

on the manuscript, Jan Sönnemark of Halmstad, Sweden, 

for great field company and support, and the Perúflora staff 

together with the Manuel Arias family in Lima for generous 

logistic support. 

Dalström, S. – 2001. A synopsis of the genus Cyrtochilum (Orchidaceae; Oncidiinae): Taxonomic reevaluation and new 

combinations. Lindleyana 16(2): 56-80. 


LANKESTERIANA


A WELL-KNOWN BUT PREVIOUSLY MISIDENTIFIED ODONTOGLOSSUM 

(ORCHIDACEAE: ONCIDIINAE) FROM ECUADOR 


2304 Ringling Boulevard, unit 119, Sarasota FL 34237, U.S.A. 



stigdalstrom@juno.com 

abStraCt. A previously misidentified species of Odontoglossum (Orchidaceae, Oncidiinae), from the botanically 

well explored western slopes of mount Pichincha in Ecuador is described and illustrated, and compared with 

similar species. The new species is most similar to O. cristatum, but differs in a larger plant habit with larger 

flowers that present a longer and straighter column with bifurcate wings, versus a more slender and more curved 

column with triangular, falcate column wings of O. cristatum. 

key wordS: Orchidaceae, Oncidiinae, Odontoglossum, new species, Pichincha, Ecuador, taxonomy 

The genus Odontoglossum Kunth, (treated by 

some authors as Oncidium) consists of some of the 

most stunningly beautiful orchids that exist, and that 

have appealed to, and mesmerized not only orchid 

people around the world for almost two centuries. 

Odontoglossum species are also some of the most 

difficult to define taxonomically due to a variety 

of reasons. Their’ impressive natural variation and 

floral plasticity may be the very reason why they are 

so attractive to growers but also turn taxonomy into 

a serious befuddlement. The species described here 

has been known to orchid collectors and growers 

for a long time but hiding under a different name, 

“Odontoglossum cristatum” (e.g. Bockemühl 1989: 

56–58). Although our new species resembles the true 

O. cristatum Lindl., and a couple of other similar 

species in several aspects, it can be distinguished by a 

unique combination of features. Each feature may be 

shared by one or several other species but not in the 

same combination. 

Odontoglossum furcatum Dalström, sp. nov. 

TYPE: Ecuador. Pichincha: Near Tandapi, at 1800 m, 

Oct. 1982. A. Hirtz 368 (holotype, SEL). fiG. 1,, 2, 3C, 

2C1. 

diaGnoSiS: Odontoglossum furcatum is most similar to 

O. cristatum Lindl. (Fig. 3A, 3A1, 4), which occurs 

further to the south in Ecuador, near the towns of 

Zaruma and Paccha at a similarly low elevation (1200– 

1500 m), but differs in a larger plant habit with larger 

flowers that present a longer and straighter column with 

the typical bifurcated wings, versus a more slender and 

more curved column with triangular, shark-fin shaped, 

falcate column wings of O. cristatum. Odontoglossum 

hallii Lindl. (Fig 3D, 3D1, 5), has similar bifurcate 

column wings but occurs at much higher elevations, 

generally around 2800–3200 m, and exhibits larger 

flowers with a much broader, often pandurate, deeply 

lacerate lip. Odontoglossum cristatellum Rchb.f. (Fig. 

3B, 3B1, 6), also exists at a higher elevation, generally 

between 2500–3000 m, and has a shorter and stouter 

column with broad, usually rectangular wings. 

Epiphytic herb. Pseudobulbs caespitose, ancipitous, 

slightly compressed, glossy, ovoid, bifoliate, ca. 7.0 × 

2.5–3.0 cm, surrounded basally by 7 to 9 distichous 

sheaths, the uppermost foliaceous. Leaves subpetiolate, 

conduplicate, narrowly obovate to elliptic, acuminate, 

20.0–28.0 × 1.8–2.0 cm. Inflorescences axillary from 

the base of the uppermost sheaths, suberect and 

arching to subpendent, to ca. 45 cm long, weakly 

flexuous to almost straight, to ca. 10 flowered racemes. 

Floral bracts appressed and scale-like, 5–15 mm long. 

Pedicel and ovary 20–30 mm long. Flowers relatively 

large, stellate to slightly campanulate, showy and 

scented but not overly pleasantly; dorsal sepal pale 

yellow with brown spots and markings, ovate to 

elliptic, slightly obliquely acuminate, entire, 40–45 × 

12–14 mm; lateral sepals similar in color, unguiculate,


fiGure 1. Odontoglossum furcatum. A. Plant habit. B. Column and lip lateral view. C. Lip front view. D. Column lateral 

view. E. Column ventral view. F. Anthercap and pollinia dorsal, lateral and back view. G. Flower dissected. Drawn from 

holotype by Stig Dalström. 


fiGure 2. Odontoglossum furcatum, inflorescence from the 

plant that served as the holotype. Photo by S. Dalström. 

obliquely ovate, acuminate, entire, ca. 40 × 12 mm; 

petals similar in color, unguiculate, obliquely ovate, 

acuminate, entire, ca. 40 ×14 mm; lip similar in color, 

attached to the basal and lateral flanks of the column for 

ca. 4 mm, then free via a flat and narrow strap-like, ca. 

2 mm long claw, then widening into short erect lateral 

lobes, then distinctly angled downwards into a large, 

cordate to broadly ovate, slightly crenulate or serrate, 

obtuse, apically convolute and acuminate lip lamina, 

ca. 35 × 16–17 mm; callus white to pale yellow with 

red-brown longitudinal stripes and spots, consisting 

of evenly spreading laterally flattened, fleshy keels, 

becoming larger towards the center and with additional 

uneven dorsal angles and fleshy tendrils; column white 

with some brown markings apically, erect, elongate, 

slightly curved downwards towards the apex, with 

lateral keels emerging basally and extending to, and 

angled just beneath the stigma, and with generally 

distinct and slightly variable bifurcate apical wings, 

ca. 20 mm long; anthercap campanulate rostrate with a 

dalStröm — A new Odontoglossum from Pichincha, Ecuador 157 

dorsal lobule; pollinarium of two cleft/folded pyriform 

pollinia on an elongate rectangular, apically obtuse ca. 

3.5–4.0 mm long stipe, on a conspicuously hooked 

pulvinate viscidium. 

ParatyPeS: Ecuador. Carchi: Maldonado, 1800 m, without 

date, A. Andreetta 0230 (SEL). Pichincha: Andes of Quito, 

ca. 2300 m, August without date, W. Jameson 35 (K). Mt. 

Pichincha, 4100-4500 m[?; improbable altitude-probably 

feet], 17 Aug. 1923, A. S. Hitchkock 21934 (US). Above 

Tandapi, 1550 m, 14 Mar. 1982, S. Dalström 161 (SEL). 

Km 80 along road Quito–Santo Domingo, 1500 m, 27 Sept. 

1980, C. H. Dodson et al. 10557 (MO, RPSC, SEL). Same 

area, 1800 m, 20 June 1985, C. H. & T. Dodson 15855 

(MO). Tandayapa, road Nono–Nanegal, 2000 m, collected 

and flowered in cultivation by A. Andreetta, 25 Feb. 1982, 

C. H. Dodson 12859 (SEL). Ca 6 km SE of Nanegal, 2000 

m, 6 Sept. 1993, G. L. Webster et al. 30382 (UC-Davis). 

Mindo, collected Dec. 1992 and flowered in cultivation 

by J. Sönnemark in 1993 without date, S. Dalström 2065 

(SEL). Imbabura: Above Garcia Moreno, 1800 m, collected 

and flowered in cultivation by J. Sönnemark, Dec. 1992, 

S. Dalström et al. 2070 (SEL). Cotopaxi: Pujilí, Reserva 

Ecológica Los Illinizas, sector 11, sector Chuspitambo, 

W of Choasilli, 0°58’42” S, 79°06’22”W, 1760 m, 3 Aug. 

2003, P. Silverstone-Sopkin et al. 9736 (CUVC, SEL). La 

Maná, Reserva Ecológica Los Illinizas, sector El Oriente, 

access from Carmela, 0°40’18”S, 78°04’45”W, 1572 m, 

14 July 2003, P. Silverstone-Sopkin et al. 9155 (CUVC, 

SEL). 

diStribution: Northwestern slopes of the Andes in 

Ecuador, at 1500–2300 m. 

etymoloGy: The name refers to the furcated (forked) 

column wings. 

The earliest examined documentation of 

Odontoglossum furcatum is a nineteenth century 

collection by William Jameson from the “Andes of 

Quito”, deposited at Kew. It shows a compact plant with 

a short inflorescence carrying two flowers and one bud, 

mounted between two specimens of O. hallii. This O. 

furcatum specimen was determined as “Odontoglossum 

cristatum” by Bockemühl in 1985. Indeed, these two 

species are closely related and resemble each other in 

several ways. The type of O. cristatum was collected by 

Theodore Hartweg in southern Ecuador near the town 

of Paccha, perhaps contemporary with the Jameson 

collection, and it has been observed in recent years by 

Dalström, growing at 1200–1500 m, an uncommonly 



fiGure 3. A. Odontoglossum cristatum (C. Dodson 13168, SEL), flower dissected; A1. Column lateral and ventral views. 

B. Odontoglossum cristatellum (S. Dalström 556, SEL) , flower dissected; B1. Column lateral and ventral views. C. 

Odontoglossum furcatum (A. Hirtz 368, SEL), flower dissected; C1. Column lateral and ventral views. D. Odontoglossum 

hallii (S. Dalström 650, SEL), flower dissected; D1. Column lateral and ventral views. Drawn by Stig Dalström. 

low altitude for the genus. The flowers of O. cristatum 

are smaller in general and the column more slender 

and with differently shaped wings than O. furcatum. 

Although some natural variation occur in both species 

and occasional plants have been found that resemble 

intermediate forms, plants displaying the typical 

morphology of O. cristatum are not sympatric with O. 

furcatum. The bifurcate column wings of O. furcatum 


strongly resemble the wings of O. halli, which is a 

higher elevation species that displays larger flowers 

with a very different looking lip that easily separates 

the two taxa. Odontoglossum cristatellum may 

superficially resemble O. furcatum but is distinguished 

by the stout column with broad, generally rectangle 

column wings. Occasionally O. cristatellum can have 

more triangular column wings, resembling those of O.

fiGure 4. Odontoglossum cristatum. Ecuador. El Oro, S. 

Dalstrúom 962. Photograph by S. Dalström. 

dalStröm — A new Odontoglossum from Pichincha, Ecuador 159 

fiGure 5. Odontoglossum hallii. Ecuador. Imbabura, S. 

Dalstrúom 738. Photograph by S. Dalström. 

fiGure 6. Odontoglossum cristatellum. Ecuador. Loja, S. Dalström 2772. Photograph by S. Dalström. 



cristatum and occasionally some intermediate forms 

are seen, possibly resulting from natural hybridization 

in areas where the two species occur in reasonably 

close proximity, a phenomenon often reported in 

Odontoglossum. 


aCknowledGment I wish to thank Wesley Higgins for 

viewing and commenting on the manuscript. 


Bockemühl, L. 1989. Odontoglossum, a monograph 

and iconograph. Brücke-Verlag Kurt Schmersow, 

Hildesheim, Germany.


PONTHIEVA HERMILIAE, A NEW SPECIES OF ORCHIDACEAE IN THE 

CORDILLERA YANACHAGA (OXAPAMPA, PASCO, PERU) 

luiS valenzuela Gamarra 

Missouri Botanical Garden. Prolongación Bolognesi Mz. E Lote 6, Oxapampa-Pasco, Perú 

luis_gin@yahoo.es 

abStraCt. A new species of Ponthieva was found in the mountains of Yanachaga Chemillén, on a pre-montane 

forest at 1400 m in the central jungle of Peru. It is similar to P. pilosissima, but can be distinguished by the 

presence of a callus on the lip and by the color of the petals, which are boldly veined in P. pilosissima and 

inconspicuously striped in P. hermiliae. 

key wordS: Orchidaceae, Orchidoideae, Ponthieva, new species, Peru, Yanachaga 

The Orchidaceae family amazes most researchers 

because of its great diversity, with more than 28,000 

species worldwide (Govaerts et al. 2012). Just below 

2,900 have been reported to grow in Peru (Zelenko & 

Bermudez 2009), however, considering the vastness 

of the territory and diversity in complex ecosystems, 

those numbers will probably increase. The Cordillera 

Yanachaga Chemillén, located in the Oxapampa 

province, is a region that has remained unexplored 

and is likely to host orchid species not yet known to 

science. 

Globally there are a little over 3600 species of 

Orchidoideae (Bateman et al. 2003), which mainly 

share terrestrial habits. Members of the subfamily are 

characterized by a single fertile upright anther with 

sectile pollinia. The genus Ponthieva was named in 

honor of Henri Ponthieu, a French merchant who was 

sending plant collections from the West Indies to Mr. 

Joseph Banks in 1778. The genus is distributed from 

the southern United States, Mexico, Caribbean to 

southern Brazil, Colombia, Ecuador, Peru and Bolivia. 

They are mainly terrestrial plants but occasionally 

grow epiphytically. They have thickened fibrous roots, 

covered by long soft hairs and a stem that develops 

from the rhizomes. The flowers are arranged on a 

cluster inflorescences, with bracteate peduncles. The 

dorsal sepal is apically fused to the petals, which may 

or may not be fused to the sides of the column (Dodson 

& Escobar 2003). 

Ponthieva hermiliae L.Valenzuela, sp. nov. 

Type: Peru. Pasco, Oxapampa, Yanachaga Chemillén 

National Park, 1400 m. 10°24’36”S 075°19’48”W. L. 

Valenzuela 20064, M. I. Villalba, J. Mateo & R. Rivera 

(holotype, HOXA). Fig. 1, 2a–C. 

Species Ponthievae pilossimae (Sengh.) Dodson 

similis, petalibus distincte callosis in parte basali 

dilute brunneo striato-maculatis, labello basaliter 

exauriculato, calli margo proximalis rotundato non 

exciso praecipue recedit. 

Epiphytic herb, up to 46 cm tall including the 

inflorescence. Leaves spathulate-elliptic, flexuous, 24– 

26 × 2.0–2.5 cm, covered by clavate, glandular hairs 1 

mm long. Inflorescence a successively many-flowered 

raceme with 5-7 flowers opened at once. Floral bracts 

1.5 cm long, hairy. Pedicellate ovary covered with 

trichomes, 3 cm long including the pedicel. Sepals 

lanceolate, the lateral falcate-lanceolate, covered 

externally with glandular trichomes, yellowish green 

marked with brown at the insertion point, 1.0-2.0 × 0.4– 

0.5 cm. Petals oblong-lanceolate, 1.9–2.0 × 0.25–0.30 

cm, whitish green with a faint, parallel, light brown 

venation, provided with an ellipsoid callus located in the 

lower quarter. Lip yellowish-green to greenish-white, 6 

mm long, lanceolate-triangular, slightly concave in the 

proximal half and at the rear, with a 6-toothed callus 

arranged horizontally in front of the basal cavity. Anther 

cap ovate-triangular, cucullate, verrucose, dark green. 

Pollinia 4 in two pairs, clavate, 1 mm long, supported 

by a flexible elongate stipe. 

diStribution and eColoGy: Epiphyte found on the 

eastern flank of the Cordillera Yanachaga Chemillén, 

where it is apparently restricted to constantly foggy,


fiGure 1. Ponthieva hermiliae L.Valenzuela. A. Habit. B.Flower and detail of the inflorescence. C. Sepals. D. Petals. E. 

Column and lip, frontal view. F. Column and lip, lateral view. G. Anther cap, ventral view. H. Anther cap, dorsal view. I. 

pollinarium. J. Floral bract and pedicel. K. Hair. Drawn by the author from the holotype. 


premontane forest (fig. 2d). The plants are growing 

mainly on the root stem of tree ferns (Cyathea spp). 

ePonymy: The name honors Gina Hermila Gamarra 

Muñiz, the author’s mother. 

Ponthieva hermiliae is similar to P. pilosissima 

(Senghas) Dodson, but differs in exauriculate base of 

the lip (vs. with distinct retrorese lobes), the shape of 

the callus on the lip (rounded vs. excise), and the petals 

distinctly callose at the base, faintly striped with 

light brown (vs. obscurely callose, boldly striped with 

redish brown). Furthermore, the sepals of P. hermiliae 

are subsimilaar in size, whereas in P. pilosissima the 

dorsal sepal is much smaller (Senghas 1989). 

aCknowledGementS. The author wishes to thank Missouri 

Botanical Garden for the economic contribution and 

allowing scientific research in Peru, where many new taxa 

valenzuela - Ponthieva hermiliae 163 

fiGure 2. Ponthieva hermiliae. A. Flower. B–C. Details of the inflorescence. D. Habitat. Photographs by the author. 

are discovered and described to science. To Stig Dalström 

for help with the translation; to Rodolfo Vásquez M., Rocío 

del Pilar Rojas G. and María Isabel Villalba V. for their 

additions to the manuscript. 


Bateman, R. M., P. M. Hollingsworth, J. Preston, L. Yi- 

Bo, A. M. Pridgeon & M. W. Chase. 2003. Molecular 

phylogenetics and evolution of Orchidinae and selected 

Habenariinae (Orchidaceae). Bot. J. Linn. Soc. 142: 

1–40. 

Dodson C. H. 1996. Nuevas Especies y Combinaciones de 

orquídeas ecuatorianas – 4 / New orchid species and 

Combination from Ecuador – 4. Orquideología 20 (1): 

90–111. 

Dodson, C. H. & R. Escobar. 2003. Orquídeas Nativas del 

Ecuador. Volumen IV. Oncidium-Restrepiopsis. Editorial 

Colina, Medellín. 

Govaerts, R., J. Pfahl, M.A. Campacci, D. Holland Baptista, 



H. Tigges, J. Shaw, P. Cribb, A. George, K. Kreuz & J. 

Wood. 2012. World Checklist of Orchidaceae. The 

Board of Trustees of the Royal Botanic Gardens, Kew. 

Senghas, K. 1989. Die Gattung Chranichis, mit einer neuen 

Art, Chranichis pilosissima, aus Ekuador. Orchidee 


(Hamburg) 40 (2): 44-51. 

The Angiosperm Phylogeny Group (APG III). 2009. 

Botanical Journal of the Linnean Society (161): 105-121. 

Zelenko H. & P. Bermúdez. 1999). Orchids: species of 

Peru. ZAI Publications. Quito, Ecuador.


SPECIES DIFFERENTIATION OF SLIPPER ORCHIDS 

USING COLOR IMAGE ANALYSIS 

erneSto Sanz 1 , noreen von Cramon-taubadel 2 & david l. robertS 3,4 

1 Departamento de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad Autónoma de Madrid, C/Darwin, 2, 

E-28049 Madrid, Spain 

2 Department of Anthropology, School of Anthropology and Conservation, University of Kent, 

Marlowe Building, Canterbury, Kent CT2 7NR, U.K. 

3 Durrell Institute of Conservation and Ecology, School of Anthropology and Conservation, 

University of Kent, Marlowe Building, Canterbury, Kent CT2 7NR, U.K. 

4 Corresponding author: d.l.roberts@kent.ac.uk 

abStraCt. A number of automated species recognition systems have been developed recently to aid nonprofessionals 

in the identification of taxa. These systems have primarily used geometric morphometric based 

techniques, however issues surround their wider applicability due to the need for homologous landmarks. 

Here we investigate the use of color to discriminate species using the two horticulturally important slipper 

orchid genera of Paphiopedilum and Phragmipedium as model systems. The ability to differentiate the various 

taxonomic groups varied, depending on the size of the group, diversity of colors within the group, and the 

background of the image. In this study the image analysis was conducted with images of single flowers of the 

species, however since flowers are ephemeral, flowering for a relatively short period of time, such analysis 

should be extended to vegetative parts, particularly as this is the form in which they are most often traded 

internationally. 

reSumen. Una gran cantidad de sistemas de reconocimiento automático de especies se han desarrollado en los 

últimos años, como ayuda a aquellas personas que no son especialistas en la identificación de especies. Estos 

sistemas han utilizado sistemas de reconocimiento automático basados en geometría morfométrica, sin embargo 

existen límites debido a la necesidad de encontrar puntos de georreferenciación en los diferentes organismos. 

En este artículo investigamos el uso de los colores para diferenciar especies en los géneros Paphiopedilum y 

Phragmipedium, ambos con gran importancia en la horticultura. La capacidad de discriminación varía entre los 

grupos taxonómicos, dependiendo del tamaño del taxón, la variedad de colores entre las especies y el fondo de 

las imágenes. En este estudio el análisis de imágenes se ha llevado a cabo con fotografías de flores individuales. 

No obstante dado que las flores son órganos efímeros, en el futuro esta investigación incluirá partes vegetativas, 

ya que es en estado vegetativo la forma en la que se suele comerciar internacionalmente más a menudo. 

key wordS: digital, discrimination, Orchidaceae, Paphiopedilum, photograph, Phragmipedium 

Introduction. The scientific community is facing 

a taxonomic crisis. Linnean shortfall, a euphemism 

for the hole in our knowledge of biodiversity, cannot 

be estimated to within an order of magnitude (May 

1988). Faced with the vast number of species yet to 

be discovered, coupled with the diminishing training 

of new taxonomists (Hopkins & Freckleton 2002) and 

accelerating extinction rates (Pimm et al. 2006), the task 

of cataloguing Earth’s biodiversity is immense. Accurate 

species identification is key to meeting this challenge, 

however misidentification is an ever-present problem. 

For some species, routine assessments, such as counting 

the dorsal spines of stickleback fish (Gasterosteidae), 

can result in accuracies as high as 95%. For others more 

experience is required, and in some cases inconsistent 

identification can be over 40% (MacLeod et al. 2010). 

To reduce such errors we rely on expert opinion for 

the verification of a taxon’s identity. Border agencies 

are interested in identifying species controlled under 

CITES, agriculturalists in pest species, building 

developers in legally protected species, the horticultural 

industry in difference between new hybrids, as well as


the amateur naturalist communities’ general interest. 

Rapid and precise identifications are important for 

society as a whole. Computer-based automated species 

recognition has therefore been suggested as a potential 

technology to aid in the rapid identification of species, 

particularly taxa that form part of routine investigations 

(MacLeod et al. 2010). 

Automated species recognition largely focused on 

using geometric morphometic-based techniques, such 

as the elliptic Fourier description and landmark analysis 

(MacLeod et al. 2010). The problem is that, at least for 

landmark analysis, they rely on homologous points. 

For example in face recognition (Shi et al. 2006), the 

tip of a nose may be considered homologous (in the 

sense of evolutionary origins, growth and development 

etc.) as that of another human, however the further we 

move away from the same species or taxon the more 

difficult it becomes to place the landmark (e.g. where 

would you place the same landmark on an insect or 

an orchid?). The issue surrounding homology of 

landmarks reduces their applicability, resulting in the 

proliferation of individual bespoke systems. Color 

has, however, only been used rarely within the field 

of species recognition (Das et al. 1999; Nilsback & 

Zisserman 2008). Here we investigate whether orchids 

can be differentiated based on color. Specifically we 

look the slipper orchid genera, Paphiopedilum and 

Phragmipedium, due to their importance within the 

orchid horticultural industry and the fact that, being on 

Appendix I of the Convention on International Trade 

in Endangered Species, they are of particular concern 

to inspectors at border posts. 

Material and methods. A checklist of the two slipper 

orchid genera, Paphiopedilum and Phragmipedium, 

was constructed using the online World Checklist of 

Selected Flowering Plant Families (http://apps.kew. 

org/wcsp), and following the sectional delimitations 

of Cribb (1998; pers. comm.) and Pridegon et al. 

(1999). Digital images were then identified on the 

internet using a search engine (http://www.google. 

com/). Specifically we looked for images of species 

from the two genera that had approximately a black 

background, showed a single flower facing forward 

and minimal other parts of the plant. These images 

were then downloaded and a database was collated 

in Microsoft Excel. The downloaded images were 


analyzed using the online Image Color Summarizer 

v0.5 (http://mkweb.bcgsc.ca/color_summarizer/). For 

each image, a text file was generated containing the 

pixel frequencies for red (R), blue (B), green (G), hue 

(H), saturation (S) and value (V). The setting ‘extreme’ 

precision control was used. 

Factor analysis was performed to decompose the 

resultant variables obtained from the image analysis 

into principal components. Components which 

explained at least 1% of the total variance were 

extracted and used as input variables for a multivariate 

Discriminant Function Analysis (DFA). DFA was 

used in order to assess the extent to which the pixel 

frequency data could be employed to correctly 

classify individual specimens back to correct group. 

The analysis was conducted for all species, grouping 

by subgenus (in the case of Paphiopedilum) and by 

taxonomic section (in the case of Phragmipedium and 

each subgenus of Paphiopedilum). From these analyses 

we focused on the leave-one-out classification, (a) the 

percentage original grouped cases correctly classified, 

which determines if the images were properly named, 

and (b) the percentage cross-validated grouped cases 

correctly classified, that determines if it is possible 

to recognize the image as it was labeled. Analyses to 

determine the potential impact of background color 

on discrimination were also conducted by cropping 

the image and placing it on a white background. All 

statistical analyses were performed using SPSS 19.0. 

Results. From a search of the internet, 703 images 

representing 84 species of Paphiopedilum and 214 

images representing 25 species of Phragmipedium 

were acquired (Tables 1 and 2). This represents 96% 

coverage of both genera. 

Paphiopedilum. – Cross-validation within sections and 

subgenera illustrated that some species were easier 

to distinguish than others (Table 3). For example, 

Paphiopedilum glaucophyllum and P. liemianum 

have broadly similar colors and therefore even 

within an analysis of species just from the section 

Cochlopetalum, only 18.2% of images of P. liemianum 

could be assigned to correct species and in the case 

of P. glaucophyllum no images could be placed 

within the species. As mentioned this could be due to 

the similarity in color of the two species and others

Sanz et al. — Species differentiation using image analysis 166 

table 1. A list of species a from the genus Paphiopedilum, taxonomy and the number of images used within the study. 

Species Subgenus Section No. images 

P. acmodontum M.W.Wood Paphiopedilum Barbata 3 

P. adductum Asher Paphiopedilum Coryopedilum 4 

P. appletonianum (Gower) Rolfe Paphiopedilum Barbata 8 

P. aranianum Petchl. Paphiopedilum Paradalopetalum 0 

P. argus (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 11 

P. armeniacum S.C.Chen & F.Y.Liu Parvisepalum Parvisepalum 12 

P. barbatum (Lindl.) Pfitzer Paphiopedilum Barbata 13 

P. barbigerum Tang & F.T.Wang Paphiopedilum Paphiopedilum 5 

P. bellatulum (Rchb.f.) Stein Brachypetalum Brachypetalum 6 

P. bougainvilleanum Fowlie Paphiopedilum Barbata 7 

P. bullenianum (Rchb.f.) Pfitzer, Paphiopedilum Barbata 5 

P. callosum (Rchb.f.) Stein, Paphiopedilum Barbata 10 

P. canhii Aver. & O.Gruss Paphiopedilum Barbata 3 

P. charlesworthii (Rolfe) Pfitzer Paphiopedilum Paphiopedilum 12 

P. ciliolare (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 9 

P. concolor (Lindl. ex Bateman) Pfitzer Brachypetalum Brachypetalum 3 

P. dayanum (Lindl.) Stein Paphiopedilum Barbata 11 

P. delenatii Guillaumin Parvisepalum Parvisepalum 10 

P. dianthum Tang & F.T.Wang Paphiopedilum Paradalopetalum 4 

P. druryi (Bedd.) Stein Paphiopedilum Paphiopedilum 12 

P. emersonii Koop. & P.J.Cribb Parvisepalum Parvisepalum 13 

P. exul (Ridl.) Rolfe Paphiopedilum Paphiopedilum 4 

P. fairrieanum (Lindl.) Stein Paphiopedilum Paphiopedilum 16 

P. fowliei Birk Paphiopedilum Barbata 12 

P. gigantifolium Braem Paphiopedilum Coryopedilum 2 

P. glanduliferum (Blume) Stein Paphiopedilum Coryopedilum 4 

P. glaucophyllum J.J.Sm Paphiopedilum Cochlopetalum 7 

P. godefroyae (God.-Leb.) Stein Brachypetalum Brachypetalum 11 

P. gratrixianum Rolfe Paphiopedilum Paphiopedilum 10 

P. guangdongense Z.J.Liu & L.J.Chen Paphiopedilum Paphiopedilum 0 

P. hangianum Perner & O.Gruss Parvisepalum Parvisepalum 8 

P. haynaldianum (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Paradalopetalum 5 

P. helenae Aver Paphiopedilum Paphiopedilum 12 

P. hennisianum (M.W.Wood) Fowlie Paphiopedilum Barbata 6 

P. henryanum Braem Paphiopedilum Paphiopedilum 9 

P. hirsutissimum (Lindl. ex Hook.) Stein Paphiopedilum Paphiopedilum 9 

P. hookerae (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 16 

P. inamorii P.J.Cribb & A.L.Lamb Paphiopedilum Barbata 1 

(continues) 



table 1. Continues. 


P. insigne (Wall. ex Lindl.) Pfitzer Paphiopedilum Paphiopedilum 13 

P. javanicum (Reinw. ex Lindl.) Pfitzer Paphiopedilum Barbata 8 

P. kolopakingii Fowlie Paphiopedilum Coryopedilum 1 

P. lawrenceanum (Rchb.f.) Pfitzer Paphiopedilum Barbata 12 

P. liemianum (Fowlie) K.Karas. & K.Saito Paphiopedilum Cochlopetalum 11 

P. lowii (Lindl.) Stein Paphiopedilum Paradalopetalum 6 

P. malipoense S.C.Chen & Z.H.Tsi Parvisepalum Parvisepalum 20 

P. mastersianum (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 11 

P. micranthum Tang & F.T.Wang Parvisepalum Parvisepalum 18 

P. niveum (Rchb.f.) Stein Brachypetalum Brachypetalum 17 

P. ooii Koop Paphiopedilum Coryopedilum 1 

P. papuanum (Ridl. ex Rendle) L.O.Williams Paphiopedilum Barbata 12 

P. parishii (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Paradalopetalum 4 

P. parnatanum Cavestro Paphiopedilum Barbata 6 

P. philippinense (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Coryopedilum 2 

P. platyphyllum T.Yukawa Paphiopedilum Coryopedilum 1 

P. primulinum M.W.Wood & P.Taylor Paphiopedilum Cochlopetalum 9 

P. purpuratum (Lindl.) Stein Paphiopedilum Barbata 7 

P. randsii Fowlie Paphiopedilum Coryopedilum 4 

P. rothschildianum (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Coryopedilum 2 

P. sanderianum (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Coryopedilum 1 

P. sangii Braem Paphiopedilum Barbata 12 

P. schoseri Braem & H.Mohr Paphiopedilum Barbata 9 

P. spicerianum (Rchb.f.) Pfitzer Paphiopedilum Paphiopedilum 14 

P. stonei (Hook.) Stein Paphiopedilum Coryopedilum 4 

P. sugiyamanum Cavestro Paphiopedilum Barbata 4 

P. sukhakulii Schoser & Senghas Paphiopedilum Barbata 14 

P. supardii Braem & Löb Paphiopedilum Coryopedilum 2 

P. superbiens (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 14 

P. thaianum Iamwir Brachypetalum Brachypetalum 16 

P. tigrinum Koop. & N.Haseg Paphiopedilum Paphiopedilum 9 

P. tonsum (Rchb.f.) Stein Paphiopedilum Barbata 19 

P. tranlienianum O.Gruss & Perner Paphiopedilum Paphiopedilum 7 

P. urbanianum Fowlie Paphiopedilum Barbata 15 

P. venustum (Wall. ex Sims) Pfitzer, Jahrb Paphiopedilum Barbata 16 

P. victoria-mariae (Sander ex Mast.) Rolfe Paphiopedilum Cochlopetalum 6 

P. victoria-regina (Sander) M.W.Wood Paphiopedilum Cochlopetalum 4 

P. vietnamense O.Gruss & Perner Parvisepalum Parvisepalum 18 


(continues)

table 1. Continues. 

within the section, however incorrect identification 

of images on the internet in the first place could also 

be a confounding factor. Conversely in the subgenus 

Parvisepalum, P. armeniacum was correctly assigned 

to the species 61.5% of the time, while P. malipoense 

was correctly identified 70.0% of the time owing to the 

distinctive color of this species, relative to the diversity 

of colors within this subgenus. Subgenus Parvisepalum 

with seven species was found to have the highest crossvalidation 

at 52.0%, while for the section Barbata, 

with 31 species, cross-validation was 15.5%; although 

this was not the lowest (Table 3). Moving to a higher 

taxonomic level, section cross-validation was 39.5%. 

When the genus was analyzed as a whole, only two of 

the 84 species of Paphiopedilum could be identified 

at least two-thirds of the time; P. wentworthianum 

(66.7%), and P. dianthum (75.0%). 

Phragmipedium. – Similar to the situation seen in 

the genus Paphiopedilum, there was considerable 

variation in the ability to correctly identify species in 

the genus Phragmipedium (Table 4). Species such as 

P. caricinum from the section Himantopetalum had 

a low percentage of cross-validation (12.5%), with 

P. longifolium from the section Lorifolia being the 

lowest (0%). At the opposite end of the spectrum P. 

lindenii from the section Phragmipedium had 100% 

cross-validation. The section Platypetalum showed 

the highest cross-validation at 53.3% due to the low 

number of species in this section (only 2 species), 

whereas the section Lorifolia only had 18.9% crossvalidation. 

In Phragmipedium when all the species were 

analyzed by grouping them by section, section 

identification had a high cross-validation (46.6%), only 



P. villosum (Lindl.) Stein Paphiopedilum Paphiopedilum 11 

P. violascens Schltr. Paphiopedilum Barbata 17 

P. wardii Summerh. Paphiopedilum Barbata 18 

P. wenshanense Z.J.Liu & J.Yong Zhang Brachypetalum Brachypetalum 4 

P. wentworthianum Schoser & Fowlie Paphiopedilum Barbata 6 

P. wilhelminae L.O.Williams Paphiopedilum Coryopedilum 3 

P. cornuatum Z.J.Liu, O. Gruss & L.J. Chen is excluded as it is considered to be a variety of P. villosum (Cribb pers. comm.). 

a 

P. qingyongii Z.J.Liu & L.J.Chen is excluded as it is believed to be a natural hybrid (Averyanov pers. comm.) 

slightly below that seen for the section Platypetalum 

(53.3%). When looking at the genus as a whole, 

three of the 25 species analyzed had cross-validation 

percentages above 60%; P. bessae with 61.1%, P. 

schlimii with 73.7% and P. tetlzaffianum with 75%; 

being mistaken with only one other species in the case 

of P. bessae and P. tetlzaffianum, but with five others 

in the case of P. schlimii, all of them having an equal 

percentage of cross-validation. 

Image manipulation. – When images were manipulated 

in an attempt to control the background color variation 

mixed results were seen (Table 5). For subgenus 

Parvisepalum and section Paphiopedilum substantial 

increases in the ability to differentiate species was 

seen (52.0 to 67.7% and 24.6 to 47.8% respectively), 

however for subgenus Brachypetalum and section 

Cochlopetalum differentiation of species decreased 

(38.6 to 15.5% and 24.3 to 18.9% respectively). 

Discussion. Within five years of being first described 

to science, Paphiopedilum vietnamense was declared 

Extinct in the Wild due to over-collecting for the 

horticultural trade (Averyanov et al. 2003). Those 

involved in CITES, particularly within the EU and 

USA, were quick to identify trade in this species, 

however as a result the species started being traded 

as the vinicolor form of the more widely and legally 

available P. delenatii (anon. pers. comm.). These 

species are easy to tell apart, but only with knowledge 

and training; key distinguishing characters are in the 

staminode and leaves (Averyanov, pers. comm.). 

In this study, color image analysis was used 

to determine if it is a potentially useful tool for 

differentiating species. Based on the analysis of over 



table 2. A list of species from the genus Phragmipedium, taxonomy and the number of images used within the study. 

Species Section No. images 

P. andreettae P.J.Cribb & Pupulin Micropetalum 8 

P. besseae Dodson & J.Kuhn Micropetalum 19 

P. boissierianum (Rchb.f. & Warsz.) Rolfe Lorifolium 19 

P. brasiliense Quené & O.Gruss Lorifolium 5 

P. caricinum (Lindl. & Paxton) Rolfe Himantopetalum 7 

P. caudatum (Lindl.) Rolfe Phragmipedium 8 

P. christiansenianum O.Gruss & Roeth Himantopetalum 5 

P. exstaminodium Castaño, Hágsater & E.Aguirre Phragmipedium 5 

P. fischeri Braem & H.Mohr Micropetalum 8 

P. hartwegii (Rchb.f.) Pfitzer Lorifolium 1 

P. hirtzii Dodson Lorifolium 5 

P. klotzschianum (Rchb.f.) Rolfe Himantopetalum 4 

P. kovachii J.T.Atwood Schluckebieria 9 

P. lindenii (Lindl.) Dressler & N.H.Williams Phragmipedium 3 

P. lindleyanum (M.R.Schomb. ex Lindl.) Rolfe Platypetalum 7 

P. longifolium (Warsz. & Rchb.f.) Rolfe Lorifolium 14 

P. manzurii W.E.Higgins & Viveros Micropetalum 1 

P. pearcei (Rchb.f.) Rauh & Senghas Himantopetalum 13 

P. reticulatum (Rchb.f.) Schltr. Lorifolium 2 

P. richteri Roeth & O.Gruss Himantopetalum 15 

P. sargentianum (Rolfe) Rolfe Platypetalum 6 

P. schlimii (Linden ex Rchb.f.) Rolfe Micropetalum 19 

P. tetzlaffianum O.Gruss Himantopetalum 4 

P. vittatum (Vell.) Rolfe Lorifolium 4 

P. warszewiczianum (Rchb.f.) Schltr. Phragmipedium 7 

P. warscewiczii (Rchb.f.) Christenson Phragmipedium 0 

900 images from 109 species of slipper orchids, the 

results suggest that color image analysis does have the 

potential to differentiate certain species, however only 

a few can be differentiated with any degree of accuracy 

(>66.6%). 

As one may expect, as the number of species 

decrease the ability to differentiate species increases, 

coupled with this is the diversity of major colors 

within a taxon; as the color to species ratio increase 

so does species differentiation. This therefore begs the 

question why would such as system be useful if it can 

only differentiate species that are obviously different? 

Paphiopedilum armeniacum and P. malipoense are 

obviously different from species within the section 


Parvisepalum, certainly to an orchid taxonomist or a 

grower with knowledge of orchids. However, correct 

identification requires a priori knowledge in the first 

instant to differentiate them from other species. Even 

with detailed knowledge, the system classification is 

not 100% accurate. Our analyses suggest that using 

image analyses reduced the likelihood of errors; rather 

than looking through all 80+ species of Paphiopedilum 

one may only need to have a look at five or ten 

species. Sixty-seven percent of species from the genus 

Paphiopedilum were confused with only eight or fewer 

other species, thereby reducing the options to less than 

10% of the original number of species. By doing so 

this reduces the time spent by those involved in trying

to identify individuals to the species level who may 

not have same in-depth knowledge, such as border 

customs officials, and thereby reducing the number 

of enquiries that pass through to the small number of 

specialist taxonomists. 

Several factors are likely to impact on any 

system to differentiate species, such as orientation 

of the subject, quality and settings of the camera 

used to take the image, distance from subject, the 

part of the subject photographed (e.g. single flower, 

inflorescence or whole plant) and background of 

the subject. In this study we tried to control some 

of these by using approximately forward facing 

images of single flowers on a black background. 


table 3. Percentage of specimens correctly classified into original group and the cross-validated grouping results for 

specimens in the genus Paphiopedilum. 

Subgenus Section No. spp. No. images 

Original 

grouped (%) 

Cross-validated 

grouped (%) 

Parvisepalum Parvisepalum 7 100 98.0 52.0 

Brachypetalum Brachypetalum 6 57 100.0 38.6 

Paphiopedilum Coryopedilum 13 31 100.0 9.7 

Paphiopedilum Paradalopetalum 4 19 100.0 36.8 

Paphiopedilum Cochlopetalum 5 37 97.4 24.3 

Paphiopedilum Paphiopedilum 14 143 89.4 24.6 

Paphiopedilum Barbata 31 316 71.5 15.5 

All (sections) a All 7 (sections) 703 66.4 39.5 

All (species) b All 84 703 31.9 8.3 

Analysis conducted using all species grouped by a sections and bspecies. 

Section No. spp. No. images 

Further, we attempted to reduce the impact of the 

background with mixed consequences. In some cases 

this increased the ability to differentiate species, 

while in others it reduced the ability to differentiate. 

What was interesting is that it increased accuracy in 

those taxonomic groups that were generally singled 

flowered on tall inflorescences that held the flower 

away from the vegetative parts, while controlling 

the background of the flower decreased accuracy in 

those species that where multiple flowered and/or 

held the flower/s close to the vegetative parts. This 

illustrates how the background of the image can 

impact positively on species identification, and may 

not necessarily be a source that can precipitate error. 

table 4. Percentage of specimens correctly classified into original group and the cross-validated grouping results for 

specimens in the genus Phargmipedium. 

Original 

grouped (%) 

Cross-validated grouped 

(%) 

Phragmipedium 4 24 100.0 37.5 

Himantopetalum 6 51 100.0 25.5 

Platypetalum 2 15 100.0 53.3 

Lorifolia 7 53 100.0 18.9 

Micropetalum 5 56 100.0 25.5 

Schluckebieria 1 10 - - 

All (sections) a 6 (sections) 214 84.1 46.6 

All (species) b 25 214 83.2 31.7 

Analysis conducted using all species grouped by a sections and bspecies. 



table 5. Results of the Discriminant Function Analysis comparing the manipulated images against the unaltered images of 

the subgenera Brachypetalum and Parvisepalum and the sections Cochlopetalum and Paphiopedilum of the subgenus 

Paphiopedilum. 

Taxonomic Groups Discrimination Unaltered Altered 

Subgenus Brachypetalum 

Subgenus Parvisepalum 

Section Cochlopetalum 

Section Paphiopedilum 

Increased accuracy may be achieved through 

the use or addition of shape analysis, and for the 

majority of species recognition systems this is what 

it is based on (MacLeod et al. 2010). Phragmipedium 

exstaminodium and P. warszwewiczianum are difficult 

to differentiate based on color but are quite obviously 

different when one looks at the shape of the staminode. 

Further it is possible to differentiate most species of 

Phragmipedium using geometric morphometrics 

based only on the shape of the staminode (unpublished 

data). However, as mentioned in the introduction, the 

problem arises when one tries to expand the system 

from a small group of morphologically similar species, 

due to homology. In the case of staminode morphology 

in Phragmipedium, it is unlikely to have wider 

application beyond the Cypripedioideae. Further, such 

taxonomically focused tools for automating species 

recognition are also only likely to be developed for 

those species that are of particular commercial concern, 

e.g. timber and ivory. This also includes DNA-based 

technologies, where although costs are continuing to 

fall, within and between species identification is only 

economically practical for commercially important 

species and items that have DNA to start with (e.g. 

not treated items such as leathers or objects such 

as photographs). If automated species recognition 

systems are to be developed for taxonomic groups that 

are not commercially important, and/or taxonomic 

groups that are extremely species rich (as is the case 

for orchids), then more generalizable methods such 

as color image analyzes are needed. Further work is 

required into image analyzes systems to understand 

the impact on identification of confounding factors 


Original grouped (%) 100.0 100.0 

Cross-validated grouped (%) 38.6 15.5 







such as the environment in which they are grown (e.g. 

temperature, fertilizer regime), photographic system 

(e.g. camera specific optics, image resolution) and 

expansion to other taxa including hybrids and color 

forms. 

Returning to the case of Paphiopedilum 

vietnamense, which is similar to P. delenatii, but can, 

as mentioned earlier, be easily distinguished on the 

basis of their leaves (Averyanov, pers. comm.; Cribb, 

pers. comm.). A logical progression to this line of 

research would be to investigate species differentiation 

using color image analyzes on vegetative parts of the 

plant. This is the form in which orchids are more often 

traded and therefore customs officials are likely to be 

confronted with. 

aCknowledGementS. The authors would like to thank Drs. 

Averyanov and Cribb for discussions on identification and 

classification of slipper orchids. Two anonymous reviewers 

provided helpful feedback. ES was funded through an EU 

Erasmus placement grant. 


Averyanov, L., P. Cribb, P.K. Loc & M.H. Hiep. 2003. 

Slipper Orchids of Vietnam. Royal Botanic Gardens, 

Kew, UK. 

Cribb, P. 1998. The Genus Paphiopedilum, 2 nd Ed. Natural 

History Publications (Borneo), Malaysia. 

Das, M., R. Manmatha & E.M. Riseman. 1999. Indexing 

flower patent images using domain knowledge. IEEE 

Intell. Syst. 14: 24-33. 

Hopkins, G.W. & R.P. Freckleton. 2002. Declines in the

numbers of amateur and professional taxonomists: 

implications for conservation. Anim. Conserv. 5 : 245-249. 

MacLeod N., B. Mark & P. Culverhouse. 2010. Time to 

automate identification. Nature 467: 154-155. 

May, R.M. 1988. How many species are there on Earth? 

Science 241: 1441-1449. 

McGough, H.N., D. L. Roberts, C. Brodie & J. Kowalczyk. 

2006. CITES and Slipper Orchids. An introduction 

to slipper orchids covered by the Convention on 

International Trade in Endangered Species. The Board 

of Trustees, Royal Botanic Gardens, Kew, UK. 

Nilsback, M.-E. & A. Zisserman. 2008. Automated 

flower classification over a large number of classes. 


Proceedings of the Indian Conference on Computer 

Vision, Graphics and Image Processing 6: 722-729. 

Pimm, S., P. Raven, A. Peterson, C. H. Şekercioğlu & P. R. 

Ehrlich. 2006. Human Impacts on the rates of recent, 

present, and future bird extinctions. P. Natl. Acad. Sci. 

USA 103: 10941-10946. 

Pridgeon, A. M., P. J. Cribb, M. W. Chase & F. 

Rasmussen (eds.). 1999. Genera Orchidacearum, 

Vol 1: Apostasioideae and Cypripedioideae. Oxford 

University Press, UK. 

Shi, J., A. Samal & D. Marx. 2006. How effective are 

landmarks and their geometry for face recognition? 

Comput. Vis. Image Und. 102: 117-133. 


LANKESTERIANA


ESTUDIO DE LA ORqUIDEOFLORA DE LA RESERVA PRIVADA 

CHICACNAB, ALTA VERAPAz, GUATEMALA 

edGar alfredo mó mó 1—3 & edGar armando ruiz Cruz 1 

1 Universidad de San Carlos de Guatemala (uSaC), Carrera de Agronomía, Centro Universitario del Norte 

(Cunor), Cobán, Alta Verapaz, Guatemala 

2 Orquideario Agronomía-Cunor-uSaC, Carrera Agronomía, Centro Universitario del Norte (Cunor), 

Cobán, Alta Verapaz, Guatemala 

3 Autor para la correspondencia: alfredomo2@hotmail.com 

reSumen. Se realizó un estudio orquideoflorístico en la reserva privada Chicacnab, que se localiza en San Juan 

Chamelco, Alta Verapaz. La metodología de trabajo se basó en un muestreo referencial para elegir las parcelas 

y árboles, dependiendo de la densidad del bosque y su elevación. El método que se utilizó para muestrear los 

árboles fue el de zonas de estratificación del forófito; más específicamente la división en 5 estratos propuesta 

por Johansson. Se muestrearon 421 árboles y 7 aéreas para plantas terrestres y litófitas, con un total de 6 743 

especímenes. Se detectaron 46 especies, pertenecientes a 22 géneros de la familia Orchidaceae, entre ellas 4 

especies endémicas de Guatemala, 10 registros nuevos para Alta Verapaz y un nuevo registro para Guatemala. 

El hábito de crecimiento más frecuente fue el epífito. 

abStraCt. This floristic study was carried out at the Chicacnab private preserve, located in San Juan Chamelco, 

Alta Verapaz. The methodology was based on referential sampling in order to choose the locations and the trees 

according to the density and elevation of the forest. Johansson’s methodology, in which the phorofite is divided 

up into 5 strata, was used for sampling. Samples were collected from 421 trees and 7 areas for terrestrial and 

lithophytic plants with a total of 6 743 species. We found 46 species and 22 genera of the family Orchidaceae, of 

which 4 Guatemalan endemics, 10 new records for Alta Verapaz and one new record for Guatemala. The most 

frequent habit was the epiphytic. 

key wordS: Orchidaceae, Lepanthes, Epidendrum, Stelis, Guatemala, Alta Verapaz, forófito, floristica 

Introducción. Los bosques nubosos se caracterizan 

por ser ecosistemas muy húmedos, ubicados en 

elevaciones de 1,300 a 3,500 metros sobre el nivel 

del mar. Desgraciadamente estos bosques se han ido 

perdiendo por el avance de la frontera agrícola y la 

tala desmoderada de árboles, y con ello la extinción 

de la flora y fauna. Las orquídeas son una de las pocas 

familias de plantas que tienen una distribución a nivel 

mundial, a excepción de los polos y los desiertos; en 

su diversidad pueden ser epífitas, terrestres y litófitas. 

Debido a la nubosidad, estos bosques permiten el 

crecimiento de muchas plantas, especialmente de la 

familia Orchidaceae; la mayor parte de ellas crece en 

la copa de los árboles. La reserva privada Chicacnab 

(RPC), San Juan Chamelco, Alta Verapaz, cuenta con 

un área de bosque de aproximadamente 89.6 hectáreas; 

no cuenta con un inventario ni determinación botánica 

de la familia Orchidaceae, aunque en esta reserva se 

encuentran grandes cantidades de orquídeas, entre 

las cuales probablemente se encuentren algunas poco 

frecuentes o hasta desconocidas. 

Planteamiento y delimitación del problema. La RPC 

cuenta con un área de bosque nuboso para proteger 

el Quetzal, Pharomachrus mocinno. Sin embargo, 

no cuenta con un inventario de la riqueza de la flora, 

que sería de gran relevancia considerando que dichos 

bosques son el hábitat de una gran diversidad de 

plantas, especialmente de la familia de Orchidaceae. 

La amenaza de este bosque nuboso es el avance de 

la frontera agrícola, y la deforestación de las áreas 

que colindan con la reserva por parte de algunos 

comunitarios que entran a cortar leña a la propiedad 

privada, provocando una alteración en los ecosistemas. 

La RPC es un rico banco de germoplasma de la familia 

Orchidaceae. Actualmente se desconoce qué especies


fiGura 1. Composición del bosque de la Reserva Privada Chicacnab. A. Vista de las copas. B. Vista del sotobosque. 

Fotografías por E. A. Mó Mó. 

se protegen en la reserva, su distribución natural, 

cuáles son endémicas así como cuales son los géneros 

predominantes. 

Justificación. La RPC no cuenta con la determinación 

de géneros y especies de la familia Orchidaceae, así 

mismo se desconoce la distribución de sus hábitats. 

Según lo anterior, se debe realizar un inventario y 

una determinación botánica y como resultado, los 

comunitarios podrán tener otro motivo para el cual 

proteger la reserva. Podrán así no solo conocer todas 

las especies de Orchidaceae, sino que conocer sus 

nombres y las características que las distinguen. 

El inventario es importante para los comunitarios, 

ayudándolos a que puedan así proteger y dar a 

conocer a los visitantes las riquezas con que cuenta 

la reserva. La reserva trabaja en conjunto con dos 

comunidades que son colindantes y que se benefician 

económicamente del ecoturismo y eso los insta a 

valorar sus propios bosques. 

Marco referencial 

Ubicación geográfica — El municipio de San 

Juan Chamelco, pertenece al departamento de Alta 

Verapaz ubicado en la región norte de Guatemala. 

Posee una extensión superficial de aproximadamente 

80 km² su cabecera municipal está localizada en las 

coordenadas geográficas 15° 25’ 20” N y 90° 19’ 45” 

W (Rodríguez Sandoval 2003). La RPC se localiza 

en Caquipec en la comunidad Nuevo Chicacnab 


posee una extensión superficial de 89.6 hectáreas, 

a un intervalo de elevación de 1,250 a 2,460 m. De 

acuerdo a la clasificación de Zonas de vida de J. R. 

de la Cruz, la mayor parte del municipio corresponde 

al Bosque Pluvial Montano Bajo Subtropical (bp- 

MB) (fig. 1). La temperatura oscila entre los 14.9 y 

los 18.7 ºC; caracterizándose por un clima templado. 

La humedad relativa promedio anual es de 80%; 

distribuyéndose la precipitación entre los 200 a 210 

días del año, lo anterior da como resultado que el 

volumen de lluvia en promedio oscila entre los 3,000 

a 4,000 mm anuales (Rodríguez Sandoval 2003). 

Metodología. El reconocimiento del área de estudio 

se hizo mediante observación directa del área de 

investigación, se realizó una aproximación de las 

condiciones actuales del bosque, apoyándose en 

el uso de la hoja cartográfica Guatemala 2161 II a 

escala 1:50,000 y GPS. Se delimitó el área de estudio 

mediante la densidad del bosque y la cantidad 

de especímenes que se pudieron observar en los 

arboles, se marcaron las áreas de muestra en la parte 

norte, sur, este y oeste, y a diferentes elevaciones 

de la reserva. El método de muestreo utilizado fue 

de manera referencial, se tomaron con respecto a 

la orientación de la luz, la densidad población y la 

altitud. Los tipos de muestreo fueron: (1) para las 

orquídeas terrestres y litófitas fue la medida de una 

parcela de 30 × 50 m y (2) para las orquídeas epífitas 

el área de muestreo fueron los árboles y arbustos.

mó mó & ruiz Cruz — Orquideoflora de la reserva Chicacnab, Guatemala 177 

Se utilizó la metodología de Johansson (1974) (fig. 

2). Los árboles y las parcelas fueron debidamente 

identificados con paletas plásticas con numeración 

correlativa. Los especímenes fueron debidamente 

observados y contabilizadas en cada estrato de los 

árboles. 

Intensidad de muestreo — El número de parcelas y 

árboles se determinó dependiendo de las elevaciones 

y la densidad de orquídeas que se encuentran en la 

reserva. Se tomó en cuenta la cantidad de especímenes 

sobre los árboles, eso fue un factor para la selección 

de las áreas de muestreo. En cada parcela y árbol 

se tomaron datos generales; número de parcela o 

árbol, elevación sobre el nivel de mar, números 

de individuos por especie que se localizan en el 

árbol. Para la toma de datos de las plantas epífitas 

se utilizó el sistema de estratificación del forófito 

en zonas. Los arboles se dividieron en 5 estratos. 

El tronco es dividido en dos secciones, la primera 

corresponde a una pequeña porción cercana al suelo 

(zona A) y la segunda porción más grande, incluye 

el resto del tronco hacia la primera ramificación 

(zona B); las ramas son divididas en tres estratos: 

las primeras y segundas ramificaciones (zona C y 

D, respectivamente) y la copa (zona E), siguiendo 

la metodología de Johansson (1974). Las litófitas y 

las terrestres se hicieron parcelas de 1,500 m 2 . Se 

colectaron 2 especímenes vegetales de cada una de 

las especies presentes en las parcelas y árboles. 

Toma de muestras para herbario — Para facilitar la 

determinación de las especies se preservaron en frascos 

de vidrio 1–3 flores, hojas, pseudobulbos, pseudotallos o 

semillas en solución: glicerina 5%, agua destilada 25% 

y alcohol de 70%. Los frascos fueron identificados con 

un código personal, para la tabulación de datos e ingreso 

a los herbarios. 

Toma de muestras para el Orquideario — Si la especie 

de orquídea era pequeña o de tamaño mediano, se 

recolectó todo el espécimen; si la especie era muy 

grande, se tomó solamente una porción de ella. Las 

plantas fueron identificadas en el Orquideario de 

Agronomía del Centro Universitario del Norte. Las 

orquídeas fueron identificadas con claves dicotómicas, 

con herramientas como lupas, estereoscopios y 

microscopio. 

fiGura 2. Zonas de estratificación del forófito, según la 

metodología de Johansson (1974). Fuente: Mejía 

Rosero et al. 2008. 

La identificación de las plantas que no poseían flores 

se realizó tomando en cuenta hojas, pseudobulbos, 

pseudotallos, semillas, tamaño de la planta, para 

llegar a una identificación aproximada. Las plantas 

identificadas de esta manera llevan las abreviaturas 

siguientes: afin a (aff.) y con forma a (cf.). Se 

ordenaron las especies alfabéticamente, igualmente 

se le asignó un código de colecta y de herbario. Las 

plantas colectadas para el Orquideario se etiquetaron 

con paletas plásticas de color amarillo y blanco, que 

llevan el nombre de la especie y la fecha de colecta. 

Las muestras de herbario se etiquetaron con un código 

de colecta y a la vez una tarjeta con la identificación de 

la muestra con datos como; departamento, municipio, 

elevación a la que fue encontrada, familia, género, 

identificador, colector y fecha de colecta. 

Entrega de material para herbario — El material 

para herbario será trasladado para las instalaciones 

del Herbario de la Facultad de Biología de Guatemala 

(BIGU), la Facultad de Agronomía de Guatemala 

(AGUAT) y Centro de Datos para la Conversación 



tabla 1. Especies determinadas de la reserva privada 

Chicacnab. 

Taxón Hábito 

Anathallis platystylis Epífito 

Arpophyllum cf. alpinum Epífito 

Arpophyllum giganteum Epífito 

Arpophyllum medium Epífito 

Bletia purpurea Terrestre 

Calanthe calanthoides Terrestre 

Camaridium cucullatum Epífito 

Camaridium hagsaterianum Epífito 

Camaridium meleagris Epífito 

Coelia bella Epífito 

Dichaea trichocarpa Epífito 

Elleanthus cynarocephalus Epífito 

Epidendrum aberrans Epífito 

Epidendrum badium Epífito 

Epidendrum beharorum Epífito 

Epidendrum cerinum Epífito 

Epidendrum chloe Epífito 

Epidendrum laucheanum Epífito 

Epidendrum polyanthum Epífito 

Epidendrum santaclarense Epífito 

Epidendrum trachythece Epífito 

Goodyera striata Terrestre/ Epífito 

Helleriella nicaraguensis Epifito 

Isochilus aurantiacus Epifito 

Leochilus johnstonii Epifito 

Lepanthes doeringii Epifito 

Lepanthes fratercula Epifito 

Lepanthes matudana Epifito 

Lepanthes mittelstaedtii Epifito 

Lepanthes quetzalensis Epifio 

Lepanthes tactiquense Epifito 

Malaxis maianthemifolia Epifito/Terrestre 

Pachyphyllum hispidulum Epifito 

Ponera juncifolia Epifito 

Ponera pellita Epifito 

Prosthechea pseudopygmea Epifito 

Prosthechea varicosa Epifito/Terrestre 

Rhynchostele cordata Epífito 

Rhynchostele stellata Epífito 

Stelis aeolica Epífito 

Stelis jalapensis Epífito 

Stelis megachlamys Epífito 

Stelis ornata Epífito 

Stenorhynchos speciosum Epífito 


tabla 2. Modus vivendi de las orquídeas de reserva privada 

Chicacnab. 

Hábito No. de plantas % 

Epífito 40 86.96 

Terrestre 2 4.35 

Epífito/Terrestre 3 6.52 

Terrestre/Litófito 1 2.17 

(CDC) del Centro de Estudios Conservacionista 

(CECON). Las Facultades y el Centro son parte 

de la Universidad de San Carlos de Guatemala. El 

material vivo se entregó con toda la información para 

el Orquideario de Agronomía–CUNOR–USAC del 

Centro Universitario del Norte de la Universidad de 

San Carlos de Guatemala. 

Resultados. Se determinaron 46 especies, las cuales se 

desglosan en los siguientes modus vivendi; 40 especies 

epífitas, 2 especies terrestres, 1 especie litófita/terrestre, 

3 especies terrestres / epífitas (tabla 1). 

Hábito de las orquídeas en la Reserva — Se 

determinaron dos tipos de hábito y dos combinaciones; 

las combinaciones fueron epífita/terrestre y 

terrestre/litófita. La mayoría de las especies que 

se determinaron (el 86,96%) son de hábito epífito, 

dándonos como el modus vivendi dominante, lo cual 

es de esperarse, ya que por la densidad del bosque es 

difícil el crecimiento de plantas terrestres y litofitas 

(tabla 2). La falta de luz promueve que algunas que 

son terrestres hayan cambiado su hábito, volviéndose 

epifitas en busca de la luz. Algunas especies como 

Camaridium cucullatum, Epidendrum santaclarense 

y Stelis aeolica fueron encontradas en el suelo, pero 

estas plantas no se tomaron en cuenta como terrestre 

ya que se encuentran tiradas por condiciones 

climáticas o humanas que pudieron quebrar las 

ramas de algunos árboles. Estas plantas tienen una 

mínima posibilidad de sobrevivir. Se determinaron 

46 especies pertenecientes a 22 géneros; el género 

más abundante fue Epidendrum, que con 10 especies 

suma el 21,74% del total de especies determinadas 

por género. 

Datos del muestreo — Plantas epífitas: Los árboles 

se escogieron de manera referencial, observando 

los que poseían gran cantidad de especímenes,

tabla 3. Datos de nuestras de 421 árboles, divido en 5 

estratos. 

Taxón A B C D E 

Anathallis platystylis 3 7 169 141 48 

Arpophyllum cf. alpinum 1 3 

Arpophyllum giganteum 23 55 3 

Arpophyllum medium 134 45 7 

Camaridium cucullatum 5 107 175 29 

Camaridium hagsaterianum 9 4 

Camaridium meleagris 20 34 2 

Coelia bella 17 4 

Dichaea trichocarpa 3 1 3 2 

Elleanthus cynarocephalus 13 5 

Epidendrum aberrans 43 93 23 

Epidendrum badium 85 55 23 12 

Epidendrum beharorum 26 19 

Epidendrum cerinum 11 3 

Epidendrum chloe 167 173 44 

Epidendrum laucheanum 2 13 

Epidendrum polyanthum 5 9 

Epidendrum santaclarense 3 48 35 14 

Epidendrum trachythece 5 80 104 31 

Goodyera striata 2 9 

Helleriella nicaraguense 1 1 1 

Isochilus aurantiacus 6 170 63 12 

Leochilus johnstonii 4 1 

Lepanthes doeringii 8 12 32 43 10 

Lepanthes fratercula 332 466 7 13 80 

Lepanthes matudana 130 260 8 5 

Lepanthes mittelstaedtii 6 4 

Lepanthes quetzalensis 142 160 56 

Lepanthes tactiquense 61 137 22 

Malaxis maianthemifolia 2 9 

Pachyphyllum hispidulum 1 

Pleurothallis matudana 9 14 10 

Ponera juncifolia 1 11 4 


Ponera pellita 49 42 76 21 

Prosthechea pseudopygmaea 5 2 

Prosthechea varicosa 18 63 108 26 

Rhynchostele cordata 6 3 18 12 9 

Rhynchostele stellata 381 485 167 

Stelis aeolica 57 102 23 

Stelis jalapensis 10 

Stelis megachlamys 20 18 3 

Stelis ornata 4 12 3 

Stenorrhynchos speciosum 36 48 8 

tabla 4. Número de especímenes por estratos. 

Estrato No. de especímenes % 

A 485 7.76 

B 946 15.14 

C 1939 31.03 

D 2257 35.54 

E 681 10.53 

tabla 5. Número de especies por estratos. 

Estrato Especies % 

A 8 6.20 

B 18 13.95 

C 35 27.13 

D 39 30.23 

E 29 22.48 

tabla 6. Número de géneros por estrato. 

Estrato Género % 

A 6 8.96 

B 13 19.40 

C 14 20.90 

D 19 28.36 

E 15 22.39 

diversidad de especies y altitudes. Los estratos 

se dividieron basándose en la metodología de 

Johansson (1974) (Fig. 2), distribuidos de la 

manera siguiente; el tronco está dividido en dos 

secciones, la primera corresponde a una pequeña 

porción cercana al suelo de 20 cm (estrato A) y la 

segunda porción, incluye el resto del tronco antes 

de la primera ramificación (estrato B); las ramas son 

divididas en tres estratos: las primeras y segundas 

ramificaciones (estratos C y D, respectivamente) y 

la copa (zona E) (tabla 3). Según lo observado en 

cada estrato, se recolectaron significativamente más 

especímenes en los estrato C y D, contribuyendo 

juntos a más de 70% de los especímenes (tabla 4). 

Por otro lado, fueron los estratos C, D y E los que 

contabilizaron mayor cantidad de especies, con más 

de 20% en cada uno (tabla 5), un patrón similar se 

encontró en el número de géneros encontrados en 

cada estrato, que fue alrededor del 20% para los 

estratos B, C, D y E (tabla 6). Cabe destacar que 

el estrato D fue constantemente donde se encontró 

mayor diversidad. 



Comentarios de las especies determinadas 

1. Anathallis platystylis (Schltr.) Pridgeon & M.W. 

Chase, Lindleyana, 16: 250. 2001. Es una de las 

especies más abundantes en la reserva, distribuida 

en toda el área. Se localiza en los estratos C, D y E. 

2. Arpophyllum cf. alpinum Lindl., Benth. Pl. Hartw. 

93. 1842. Las hojas y rizomas coinciden con la 

descripción de A. alpinum, pero no hay reportes 

existentes de esta especie para Alta Verapaz, los 

departamentos donde han sido colectados son 

Huehuetenango, Jalapa, Quetzaltenango, San Marcos 

y Totonicapán, estos departamentos poseen zona vida 

similares a algunas partes de Alta Verapaz, la cual es 

Bosque Pluvial Montano Bajo Subtropical (bp-MB), 

según Las Zonas de vida de De la Cruz. Además de 

la coincidencia de las zonas de vida, también se 

encuentran entre el rango de las alturas que es de 

2,000 a 3,600 m, según Dix y Dix (2000); ya que 

ha sido colectada la especie en Miramundo, Jalapa a 

una altura de 2,400 m, los encuentros, Totonicapán 

a una altura de 2,900 m, la cual coincide con la 

altura (2,420 m) que fue localizada la especie en 

la Reserva. Ames y Correl (1952-1953) reportan 

la colecta 1140; II 1632 de Tuerckheim para Alta 

Verapaz en Cobán. En la cual se afirma la existencia 

de la especie en la colecta realizada en dicha reserva. 

Su abundancia es rara en su distribución localizada. 

Se localiza en los estratos B y C. 

3. Arpophyllum giganteum Hartw. ex Lindl., Ann. 

& Mag. Nat. Hist. 4: 384. 1840. Su abundancia 

es común en los estratos localizados y rara dentro 

de su distribución en la reserva. Se localiza en los 

estratos C, D y E. 

4. Arpophyllum medium Rchb.f., Beitr. Orch. Centr.- 

Amer. 89. 1866. Una planta con gran población 

alrededor de la reserva a una altura de 1 800 a 2 

200 m, en las ramas primarias y secundarias de los 

árboles grandes. En grandes macollas en las ramas, 

abundante dentro de una amplia distribución en 

la reserva y común en los estratos localizados. Se 

localiza en los estratos C, D y E. 

5. Bletia purpurea (Lam.) DC., Men. Soc. Phys. Hist. 

Nat. Geneve 9:97. 1841. Una planta muy común en 

la reserva, se localiza en la parte donde ya no existe 

bosque, entre la maleza. Su abundancia es común 

dentro su amplia distribución en la reserva. 


6. Calanthe calanthoides (A. Rich. & Galeotti) 

Hamer & Garay, Orquíd. El Salvador 1: 90-91. 

1974. Especie muy rara en la reserva. Las áreas de 

muestreo de 30 × 50 utilizado para las orquídeas 

terrestres solo se localizaron 1 o 2 plantas.. Esta 

especie puede localizarse no sólo en suelo si no 

también en árboles caídos, que se encuentran en 

descomposición. 

7. Camaridium cucullatum (Lindl.) M. A. Blanco, 

Lankesteriana 7: 520. 2007 (Fig. 3b). Especie muy 

común en la reserva, con una gran variabilidad 

de colores. Abundante dentro de una amplia 

distribución y común en los estratos localizados. 

Se localiza en los estratos B, C, D y E. 

8. Camaridium hagsaterianum (Soto Arenas) M.A. 

Blanco, Orquídea (Méx.) 12(2): 252-253. 1992 

(Fig. 3C). Su abundancia es rara dentro de su 

distribución localizada en la reserva. Se localiza en 

los estratos C y D. 

9. Camaridium meleagris (Lindl.) M. A. Blanco, 

Lankesteriana 7: 520. 2007 (Fig. 3d). Especie 

muy común en la reserva, los colores de las flores 

son muy variables, al igual que el tamaño de las 

plantas, se localizan en pequeños árboles, en los 


10. Coelia bella (Lem.) Rchb.f., Ann. Bot. Syst. 6: 

218. 1861. Su abundancia es rara dentro de su 

distribución amplia en la reserva de 1 a 2 plantas 

por cada árbol, pero en grandes macollas en las 

ramas primarias. Una de las plantas de flores más 

bellas en reserva. Se localiza en los estratos C y D. 

11. Dichaea trichocarpa (Sw.) Lindl., Gen. Sp. Orchid. 

Pl. 209. 1833. Coexistente con líquenes, gracias 

a esto son muy difíciles de ver en los troncos, 

forman grandes alfombras, muy fácil de confundir 

con algunas especies de Lycopodium en la reserva. 

Común dentro de una distribución localizada en 

la reserva y raro en los estratos donde se pudo 

observar. Se localiza en los estratos A, B, C y D. 

12. Elleanthus cynarocephalus (Rchb.f.) Rchb.f., 

Walp. Ann. Bot. Syst. 6: 476. 1862. Su abundancia 

es común dentro de una distribución localizada 

en la reserva y raro en los estratos donde se pudo 

observar. Se localiza en los estratos C y D 

13. Epidendrum aberrans Schltr., Repert. Spec. 

Nov. Regni Veg. 15:206. 1918 (Fig. 3e). Especie 

bien distribuida en toda el área de la reserva. Su


abundancia es común dentro de una distribución 

localizada en la reserva y rara dentro de su 

distribución amplia. Se localiza en los estratos C, 

D y E. 

14. Epidendrum badium Hágsater, Icon. Orchid. 2: t. 

110. 1993 (Fig. 3f, 3G). Se observaron y colectaron 

individuos de esta especie con coloraciones 

distintas al del tipo, se pudo constatar colores como 

rosado y una variación albina. Las poblaciones de 

esta especie se encuentran distribuidas en la mayor 

parte de la reserva. Su abundancia es rara dentro 

de su distribución amplia en la reserva y es una 

planta muy escasa en su localidad tipo que es Baja 

Verapaz y es un nuevo reporte para Alta Verapaz. 

Se localiza en los estratos B, C, D y E. 

15. Epidendrum beharorum Hágsater, Icon. Orchid. 

2: t. 112 .1993 (Fig. 3h). Especie observada en el 

estrato C y D de los árboles, su abundancia es rara 

dentro de su distribución amplia. 

16. Epidendrum cerinum Schltr., Beih. Bot. Centralbl. 

36(2): 402. 1918. Su abundancia es escasa en su 

distribución en la reserva, se localiza en pequeños 

arbustos del sotobosque, puede confundirse 

muy fácil con lianas o algunas otras plantas de 

crecimiento péndulo. Se localiza en los estratos D 

y E. 

17. Epidendrum chloe Rchb.f., Bonplandia (Hannover) 

4: 327. 1856 (Fig. 3i). Localizadas en los estratos 

C, D y E de los árboles, se observo que las plantas 

mientras se encontraban a mayor alturas las hojas 

eran de color verde y las que se encontraban a menor 

altura era de color rojizo. En un rango de mayor 

de 2300 m, hojas verdes, menor de 2300 m, hojas 

rojizas. Abundancia es común dentro de una amplia 

distribución y en los estratos localizados es muy 

abundante. Se localizo una forma alba dentro de la 

coloración típica de la descripción. 

18. Epidendrum laucheanum Rolfe, Bull. Misc. Inform. 

Kew 1893: 63. 1893 (Fig. 4a). Solo se observó 1 

individuo en cada árbol en donde se localizó la 

especie, se pudieron observar en pequeños arbustos 

y en los árboles grandes en las ramas primarias, su 

abundancia es rara y muy escasa. Se localiza en los 

estratos C y D. 

19. Epidendrum polyanthum Lindl., Gen. Sp. Orchid. 

Pl. 106. 1831. Los especímenes vistos son muy 

variables, tanto en el tamaño de las plantas, como de 

las flores, con diferentes tonalidades. Su abundancia 

es común dentro de su amplia distribución en la 

reserva. Se localiza en los estratos C y D. 

20. Epidendrum radicans Pav. ex Lindl., Gen. Sp. 

Orchid. Pl.: 104. 1831. Se localizaron individuos 

tanto de manera litófita o terrestre, es muy vulnerable 

ya que crece a la orilla de los senderos o veredas, 

cuando las limpias pasan cortando las plantas. 

21. Epidendrum santaclarense Ames, Sched. Orch. 4: 

49-50. 1923 (Fig. 4b). Especie muy distribuida en 

toda la reserva, los individuos se localizaron en los 

estratos B, C, D y E de los árboles, es abundante 

dentro de una amplia distribución. No se encontraron 

reportes preexistentes de esta especie para Alta 

Verapaz, los departamentos donde se reportan son 

Guatemala, Jalapa y Zacapa, estos departamentos 

poseen Zona Vida similares a algunas partes de Alta 

Verapaz, la cual es Bosque Pluvial Montano Bajo 

Subtropical (bp-MB), según las zonas de vida de 

De la Cruz. Además de la coincidencia de las zonas 

de vida, también se encuentran entre el rango de las 

alturas que es de 2,000 a 3,000 m, según Dix & Dix.; 

Ya que ha sido colectada la especie en Miramundo; 

Jalapa, Guatemala en el Volcán del Pacaya, la 

cual coincide con la altura (2,300 a 2,460 m) que 

similara al intervalo altitudinal en la que la especie 

fue localizada dentro de la reserva. Se localiza en los 

estratos B, D y E. 

22. Epidendrum trachythece Schltr., Repert. Spec. Nov. 

Regni Veg. 3: 249. 1907. Especie que se localiza 

tanto en pequeños arbustos y árboles grandes, es 

abundante dentro de una amplia distribución. No se 

encontraron reportes existentes de esta especie para 

Alta Verapaz, los departamentos donde se reportan 

son Chiquimula, Guatemala, El Progreso, Jalapa 

y Zacapa, estos departamentos poseen zona vida 

similar a algunas partes de Alta Verapaz, la cual 

es Bosque Pluvial Montano Bajo Subtropical (bp- 

MB), según las zonas de vida de De la Cruz. Además 

de la coincidencia de las zonas de vida, también se 

encuentran entre el rango de las alturas que es de 

2,100 a 2,400 m, según Dix & Dix.; ya que ha sido 

colectada la especie en Sierra de la Minas; Zacapa, 

Guatemala en el Volcán de Pacaya, la cual coincide 

con la altura (2,340 a 2460 m) que fue el rango en 

que se localizó la especie en la reserva. Se localiza 

en los estratos B, C, D y E. 



A B C 

D E F 

G H I 

fiGura 3. A. Bletia purpurea. B. Camaridium cucullatum. C. Camaridium hagsaterianum. D. Camaridium meleagris. E. 

Epidendrum aberrans. F. Epidendrum badium. G. Epidendrum badium f. alba. H. Epidendrum cerinum. I. Epidendrum 

chloe. Fotografías por E. A. Mó Mó. 



A B C 

D E F 

G H I 

fiGura 4. A. Epidendrum laucheanum. B. Epidendrum santaclarense. C. Isochilus aurantiacus. D. Lepanthes fratercula. 

E–I. Lepanthes matudana. Fotografías por E. A. Mó Mó. 



23. Goodyera striata Rchb.f., Linnaea 18: 409. 1845. 

Los libros hacen mención que esta planta es de 

hábito terrestre pero se pudieron observar algunas 

plantas en estado epífita en poblaciones estables. Es 

una especie abundante en los estratos localizados 

y rara dentro de su distribución amplia. Por la 

densidad del bosque pueda ser que sea el factor 

porque la especie se ha convertido en hábito epífita. 

Se localiza en los estratos D y E. 

24. Helleriella nicaraguensis A. D. Hawkes, 

Phytologia 14: 4. 1966. Especie que se localiza en 

pequeños arbustos, su distribución es escasa y rara 

dentro de la reserva. No se encontraron reportes 

existentes de esta especie para Alta Verapaz, los 

departamentos donde se reportan son Escuintla y 

Guatemala, estos departamentos posee zona vida 

similar a algunas partes de Alta Verapaz, la cual 

es Bosque Pluvial Montano Bajo Subtropical 

(bp-MB), según las zonas de vida de De la Cruz., 

muchas personas no conocen a esta especie ya que 

la confunden con un Epidendrum. Se localiza en 

los estratos B, D y E. 

25. Isochilus aurantiacus Hamer & Garay, in Hamer 

Orq. El Salvador 3: 118. 1981 (Fig. 4C). Es una 

especie común dentro de su amplia distribución en 

la reserva. Se localiza en los estratos B, C, D y E. 

26. Leochilus johnstonii Ames & Correll, Bot. Mus. 

Leafl. 11: 21. 1943. Crece en arbustos, especie 

muy rara en la reserva fueron pocos individuos que 

se pudieron observar y en una sola población. Se 

localiza en los estratos D y E. 

27. Lepanthes doeringii Archila, Revista Guatemal. 

5(3): 5. 2002. Es una especie muy rara en la 

reserva. Las poblaciones se encuentran en las 

ramas secundarias. Si la especie se encuentra sin 

flor, es confundida con L. tactiquense Archila y 

L. verapacensis Archila, cuando posee coloración 

naranja es fácil de confundir con L. guatemalensis 

Schltr. Se localiza en los estratos A, B, C, D y E. 

28. Lepanthes fratercula Luer & Béhar, Lindleyana 

5(3): 182-198. 1990 (Fig. 4d). Es una especie 

ampliamente distribuida en la reserva, en un mismo 

árbol se encuentran cantidades considerables, 

pero como todo Lepanthes tipo L. guatemalensis 

son susceptibles a los cambios del clima, es muy 

vulnerable, en la época de verano, así como se 

encontró árboles llenos especímenes vivos y 


también se encontraron árboles con especímenes 

muertos. Las poblaciones se localizaron en los 

estratos A, B, C, D y E en alturas de 20 cm del 

suelo hasta 12m. Se observó en las poblaciones 

localizadas la convivencia con L. matudana. 

29. Lepanthes matudana Salazar & Soto Arenas, 

Orquídeas (Mex.) 14: 74-77. 1996 (Fig. 4e–4i). Es 

una especie ampliamente distribuida en la reserva, 

en un mismo árbol se encuentran cantidades 

considerables. Es una especie muy variable en 

forma de sus sépalos y pétalos en sus poblaciones. 

Se observaron en las poblaciones localizadas la 

convivencia con L. fratercula. Se localiza en los 

estratos A, B, C y D. 

30. Lepanthes mittelstaedtii Luer & Béhar, Lindleyana 

5(3): 182-198. 1990 (Fig. 5a). Es una especie 

muy rara en la reserva, pero uno de los Lepanthes 

determinados con flor más vistosa. Se localiza en 

los estratos D y E. 

31. Lepanthes quetzalensis Luer & Béhar, Lindleyana 

5(3): 182-198. 1990 (Fig. 5b). Es una especie 

ampliamente distribuida en la reserva. Las 

poblaciones se encuentran en alturas de 5 a 20 

m. Es una planta que confunde mucho con L. 

scopula pero son dos especies distintas y nunca se 

encuentras estas dos especies en el mismo hábitat. 

Convive con L. tactiquensis. Se localiza en los 


32. Lepanthes tactiquensis Archila, Revista Guatemal. 

1(1): 19–23. 1998. Como explica en sus comentarios 

el investigador que describió la especie “L. 

tactiquense como una planta endémica y en peligro 

de extinción debido a que sus poblaciones son muy 

pequeñas y además los bosques donde se localiza 

están siendo dañados severamente por el avance de 

la frontera agrícola”. Este trabajo da otro reporte 

de una nueva localidad para esta especie, donde 

las poblaciones son estables en toda la reserva, 

comparte su hábitat con L. quetzalensis. Se localiza 

en los estratos C, D y B. 

33. Malaxis maianthemifolia Schltdl. & Cham., 

Linnaea 6: 59. 1831 (Fig. 5C). Pudimos encontrar a 

la especie tanto de manera terrestre como de manera 

epífita, 2 a 3 individuos por área de muestreo para 

las orquídea terrestre, poblaciones muy distantes 

de la una a la otra. Muy variable en el tamaño de la 

planta. Se localiza en los estratos A y B.


A B C 

D E F 

fiGura 5. A. Lepanthes mittelstaedtii. B. Lepanthes quetzalensis. C. Malaxis maianthemifolia. D. Prosthechea varicosa. E. 

Stelis jalapensis. F. Stelis megachlamys f. alba. Fotografías por E. A. Mó Mó y R. Hernández (A). 

34. Pachyphyllum hispidulum (Rchb.f.) Garay & 

Dunst., Venez. Orchids Ill. 3: 236. 1965. Es 

una especie no reportada para Alta Verapaz, fue 

colectada en Guatemala en el departamento de 

Jalapa, a una altura de 2,600 m, que posee una 

similitud de Zona Vida con el lugar de colecta en 

donde se encontró, la cual corresponde al Bosque 

Pluvial Montano Bajo Subtropical (bp-MB); 

podemos además mencionar que se colectó en la 

reserva a elevación muy cercana, que es de 2460 

m. Es muy difícil de observar, ya que es muy 

fácil de confundir con algunos líquenes y puede 

confundirse con una planta pequeña de algún otro 

género que se afín a la morfología de esta especie. 

Planta muy rara y el género poco conocido en 

Guatemala. Se localiza en el estrato D. 

35. Pleurothallis matudana C.Schweinf., Bot. Mus. 

Leafl. 5: 102. 1938. Especie común de la reserva, 

se localizó las poblaciones en los estratos C, D 

y E de los árboles, bien distribuida en toda la 

reserva. 

36. Ponera pellita Rchb.f., Gard. Chron. n.s. 14: 8. 

1880. Se encuentra distribuida en toda la reserva, 

es una especie muy llamativa y grande. No 

reportada para Alta Verapaz, fue registrada para 

los departamentos de Chiquimula, Guatemala, 

Quetzaltenango, Sacatepéquez. Se localiza en los 

estratos B, C, D y E. 

37. Ponera juncifolia Lindl., Gen. Sp. Orchid. Pl. 114. 

1831. Especie que fácilmente se confunde con las 

plantas pequeñas de Isochilus aurantiacus. Especie 

poco conocida y muy rara, las poblaciones fueron 



de 3 a 6 plantas por árbol. Se localiza en los estratos 

A, B y C. 

38. Prosthechea pseudopygmaea (Finet) W.E. Higgins, 

Phytologia 82: 381. 1997 [publ. 1998]. Especie no 

muy común en la reserva, se localiza en los estratos 

C y D. 

39. Prosthechea varicosa (Bateman ex Lindl.) 

W.E.Higgins, Phytologia 82: 381. 1997 [publ. 

1998] (Fig. 5d). Se pudieron observar plantas 

tanto epífitas como terrestres; las de hábito epífito 

se pudieron observar en pequeños arbustos, en 

los troncos y ramas primarias, mientras que las 

terrestres se observaron en lugares ya sin bosque 

entre maleza de la familia Poaceae. Se localiza 

en los estratos B, C, D y E. 

40. Rhynchostele cordata (Lindl.) Soto Arenas & 

Salazar, Orquídea (México), n.s., 13: 148. 1993. 

Poblaciones localizadas en pequeños arbustos, 

en los troncos, especie bien distribuida en toda la 

reserva, en pequeñas poblaciones de 2 a 3 plantas 

por árbol. Esta especie se encuentra en peligro 

de extinción en Alta Verapaz, ya que los bosques 

donde habita están siendo talados para áreas de 

cultivo. Pudimos observar que sus poblaciones 

en la reserva son estables, eso nos indica que la 

especie en la reserva no se encuentra en peligro, 

por lo que puede considerarse como un santuario 

para esta especie. Se localiza en los estratos A, B, 

C, D y E. 

41. Rhynchostele stellata (Lindl.) Soto Arenas & 

Salazar, Orquídea (México) 13(1-2): 151. 1994. 

Nuevo reporte para el municipio y departamento, 

especie solo localizada en la parte occidente del 

país y Jalapa, se pudo observar una gran población 

de esta especie en la reserva, la cual se localizaron 

en los estratos C, D, y E. 

42. Stelis aeolica Solano & Soto Arenas, Orquídea 

(Méx.) 13(1- 2): 320. 1993. Nuevo reporte tanto 

para el departamento, como para el país, una 

especie que se encontraba restringida para México 

y El Salvador. En tres de cinco estratos (C, D y E) 

estudiados se localizaron los especímenes, el D es 

el dominante. En el área de estudio se colectó una 

forma viridis de esta especie. 

43. Stelis jalapensis (Kraenzl.) Pridgeon & M. W. 

Chase, Lindleyana 16(4): 263. 2001 (Fig. 5e). 

Nuevo reporte para el departamento, planta 


restringida para Jalapa y San Marcos. Planta 

muy rara en la reserva. Se localizó sólo en 

estrato D. 

44. Stelis megachlamys (Schltr.) Pupulin, Lankesteriana 

4:74. 2002. Especie muy común en la reserva, se 

localizó una forma alba dentro de la población (Fig. 

5f). Se localiza en los estratos C, D y E. 

45. Stelis ornata (Rchb.f.) Pridgeon & M.W.Chase, 

Lindleyana 16(4): 265. 2001. Poco distribuido 

en la reserva. Especie poco conocida en la 

región de las Verapaces, muy rara y se conocen 

pocas localidades. Localizada en los estratos B, 

D y E. 

46. Stenorrhynchos speciosum (Jacq.) Rich ex Spreng., 

Syst. Veg. 3: 709. 1826. Los especímenes solamente 

se localizaron en una sola especie de árbol que es 

Erythrina sp., se encontraban distribuidas en los 

estrados C, D y E. 

Comentario general de la recolección — Se 

determinaron 46 especies y 3 formas, en las cuales las 

especies que se determinaron forma fueron Epidendrum 

badium fo. alba, Stelis aeolica fo. viridis y Stelis 

megachlamys fo. alba. Se observó que la mayoría de 

las especies que se determinaron en el área de estudio 

se encuentran de manera ampliamente distribuida. Se 

observó tres especies que son polimórficas las cuales 

fueron: Camaridium cucullatum, Lepanthes matudana 

y Rhynchostele stellata. 

Discusión de resultados. En los 421 árboles estudiados 

se encontraron en total 6,743 orquídeas en 421 árboles, 

distribuidas en 22 géneros, 46 especies y 3 formas. 

El género Lepanthes es el más abundante con 1,994 

especímenes y cuya presencia fue dominante en los 

estratos A y B de los árboles. Siguiéndoles los géneros 

Rhynchostele con 1,081 especímenes y Epidendrum con 

1,038, que habitan principalmente en los estratos C, D 

y E (tabla 7). 

Diez de las 46 especies determinadas pertenecen 

al género Epidendrum, reuniendo 21.74%, seguido 

por Lepanthes con el 13.04%, Stelis con el 10.87% y 

el resto con porcentajes de 1 a 3% (tabla 8). Cuarenta 

de las 46 especies son de hábito epífito reuniendo el 

86.96% y resto se distribuye entre terrestres, litofitos, 

epífita/terrestre y terrestre/litófita. 

Los árboles se dividieron en 5 estratos. En el estrato 

“D” fue donde se pudo contabilizar más especímenes, y


tabla 7. Consolidado de especímenes por género de hábito 

epifito. 

Taxón Especímenes 

Lepanthes 1994 

Rhynchostele 1081 

Epidendrum 1038 

Camaridium 385 

Anathallis 368 

Arpophyllum 271 

Stelis 252 

Isochilus 251 

Prosthechea 222 

Ponera 204 

Stenorrhynchos 92 

Pleurothallis 33 

Coelia 21 

Elleanthus 18 

Goodyera 11 

Malaxis 11 

Dichaea 9 

Leochilus 5 

Helleriella 3 

Pachyphyllum 1 

tabla 8. Números de especies por género. 

Género No. de especies % 

Epidendrum 10 21.74 

Lepanthes 6 13.04 

Stelis 5 10.87 

Arpophyllum 3 6.52 

Camaridium 3 6.52 

Ponera 2 4.35 

Prosthechea 2 4.35 

Rhynchostele 2 4.35 

Anathallis 1 2.17 

Bletia 1 2.17 

Calanthe 1 2.17 

Coelia 1 2.17 

Dichaea 1 2.17 

Elleanthus 1 2.17 

Goodyera 1 2.17 

Helleriella 1 2.17 

Isochilus 1 2.17 

Leochilus 1 2.17 

Malaxis 1 2.17 

Pachyphyllum 1 2.17 

Pleurothallis 1 2.17 

Stenorrhynchos 1 2.17 

tabla 9. Consolidado de especímenes por taxón de hábito 

epífito. 

Taxón Especímenes % 

Rhynchostele stellata 1033 16.48 

Lepanthes fratercula 898 14.32 

Lepanthes matudana 403 6.43 

Anathallis platystylis 368 5.87 

Lepanthes quetzalensis 358 5.71 

Camaridium cucullata 316 5.04 

Epidendrum chloe 296 4.72 

Isochillus auranthiacus 251 4.00 

Epidendrum trachythece 220 3.51 

Lepanthes tactiquense 220 3.51 

Prosthechea varicosa 215 3.43 

Ponera pellita 188 3.00 

Arpophyllum medium 186 2.97 

Stelis aeolica 182 2.90 

Epidendrum badium 175 2.79 

Epidendrum aberrans 159 2.54 

Lepanthes doeringii 105 1.67 

Epidendrum santaclarense 100 1.59 

Stenorrhynchum speciosum 92 1.47 

Arpophyllum giganteum 81 1.29 

Camaridium meleagris 56 0.89 

Rhynchostele cordata 48 0.77 

Epidendrum beharorum 45 0.72 

Stelis megachlamys 41 0.65 

Pleurothallis matudiana 33 0.53 

Coelia bella 21 0.33 

Stelis ornata 19 0.30 

Elleanthus cynarocephallus 18 0.29 

Ponera juncifolia 16 0.26 

Epidendrum laucheanum 15 0.24 

Epidendrum cerinium 14 0.22 

Epidendrum polyanthum 14 0.22 

Camaridium hagsaterianum 13 0.21 

Goodyera striata 11 0.18 

Malaxis majanthemifolia 11 0.18 

Lepanthes mittelstaedtii 10 0.16 

Stelis jalapensis 10 0.16 

Dichaea trichocarpa 9 0.14 

Prosthechea pseudopigmea 7 0.11 

Leochilus johnstonii 5 0.08 

Arpophyllum cf. alpinum 4 0.06 

Helleriella nicaraguense 3 0.05 

Pachyphyllum hispidulum 1 0.02 



fiGura 6. Consolidado de especímenes por taxón de hábito epífito. 

el número de éstos que fueron contabilizados es 2,257 

(35.54%). El siguiente estrato con mas individuos fue 

el “C” con 1,939 (31.03%). El estrato que contenía más 

géneros fue “D” la cual contenía 19 géneros (28.36%). 

Siguiéndolo E, C, B y A. El estrato que contenía mas 

especies fue “D” observándose 39 especies (30.23%). 

Siguiéndolo “C” con 35 y “D” con 29 especies. 

Rhynchostele stellata fue la especie más abundante 

con 1,033 especímenes (16.48%), siguiéndola 

Lepanthes fratercula con 898 (14.32%). Pachyphyllum 

hispidulum aparentemente es la especie más 

vulnerable ya que sólo se pudo encontrar una planta 

de esta especie (tabla 9; fig. 6). Epidendrum radicans 

es el taxón dominante en el hábito terrestre con 123 

individuos (36.39%). Siguiéndole Goodyera striata 

con 75 (22.19%) (tabla 10). La única especie que se 


encontró creciendo de forma litófita fue Epidendrum 

radicans (tabla 11). 

En referencia a la situación de conservación de las 

especies, según CONAP (2009) 4 son de categoría 2 y 

42 de categoría 3 (tabla 12). 

Se pudo determinar 4 especies endémicas y un 

nuevo reporte para Guatemala. Epidendrum badium, 

Lepanthes doeringii, Lepanthes mittelstaedtii y 

Lepanthes tactiquensis son las especies endémicas de 

Guatemala, mientras Stelis aeolica es un nuevo reporte 

para la flora del país. 

Se registran 10 reportes nuevos para Alta Verapaz. 

Siendo Arpophyllum alpinum, Epidendrum badium, E. 

santaclarense, E. trachytece, Isochillus auranthiacus, 

Pachyphyllum hispidulum, Rhynchostele stellata, 

Stelis aeolica, S. jalapensis y S. ornata.


tabla 10. Consolidado por taxón de hábito terrestre. 

Taxón Especímenes % 

Bletia purpurea 45 13.31 

Calanthe calanthoides 32 9.47 

Epidendrum radicans 123 36.39 

Goodyera striata 75 22.19 

Malaxis majanthemifolia 18 5.33 

Prosthechea varicosa 45 13.31 

tabla 11. Consolidado por taxón de hábito litófito. 

Taxón Especímenes 

Epidendrum radicans 97 

Conclusiones. En la reserva se estudiaron un total 

de 6,743 especímenes de 46 especies y 2 formas 

pertenecientes a 22 géneros de Orchidaceae. Los 

géneros con mayor número de especies fueron 

Epidendrum(10), Lepanthes(6) y Stelis(5). Las especies 

con mayor número de especímenes fueron Rhynchostele 

stellata(1033) y Lepanthes fratercula(898). De la 

especie Pachyphyllum hispidulum tan solo se pudo 

encontrar una sola planta la cual podemos decir que 

la planta es vulnerable y muy rara en la reserva. De las 

46 especies 40 son de hábito epífito y 6 se distribuyen 

entren terrestre, litófita, terrestre/epífita y terrestre/ 

litófita. En los 5 estratos en que se dividió el árbol se 

muestrearon 6308 especímenes, donde el estrato D fue 

el dominante contabilizándose la mayor parte de los 

especímenes. Las especies endémicas de Guatemala 

que se encuentran en la reserva son Epidendrum 

badium, Lepanthes doeringii, Lepanthes mittelstaedtii 

y Lepanthes tactiquensis (Luer 1990; Archila 2001, 

2002; Hágsater & Soto 2003), mientras que Stelis 

aeolica, anteriormente reportada para México y 

El Salvador, se reporta aquí por primera vez para 

Guatemala (Solano 1993; Ossenbach et al. 2007). 

Se reportan por primera vez para Alta Verapaz, 

Arpophyllum alpinum, Epidendrum badium, E. 

santaclarense, E. trachytece, Isochillus auranthiacus, 

Pachyphyllum hispidulum, Rhynchostele stellata, 

Stelis jalapensis y S. ornata (Dix & Dix 2000). 

En total se prepararon 55 muestras de herbario de 

las que 22 fueron depositadas en BIGU (Herbario de 

la Facultad de Biología de Guatemala), 18 en AGUAT 

(herbario de la Facultad de Agronomía de Guatemala) 

y 15 en el Centro de Estudios Conservacionistas del 

tabla 12. Cuadro de conservación de los taxones, según 

criterios de Consejo Nacional de Áreas Protegidas 

(ConaP). 

Taxón Categoría 

Anathallis platystylis 3 

Arpophyllum cf. alpinum 3 

Arpophyllum giganteum 3 

Arpophyllum medium 3 

Bletia purpurea 3 

Calanthe calanthoides 3 

Camaridium cucullata 3 

Camaridium hagsaterianum 3 

Camaridium meleagris 3 

Coelia bella 3 

Dichaea trichocarpa 3 

Elleanthus cynarocephalus 3 

Epidendrum aberrans 3 

Epidendrum badium 2 

Epidendrum beharorum 3 

Epidendrum cerinum 3 

Epidendrum chloe 3 

Epidendrum laucheanum 3 

Epidendrum polyanthum 3 

Epidendrum radicans 3 

Epidendrum santaclarense 3 

Epidendrum trachythece 3 

Goodyera striata 3 

Helleriella nicaraguense 3 

Isochilus aurantiacus 3 

Leochilus johnstonii 3 

Lepanthes doeringii 2 

Lepanthes fratercula 3 

Lepanthes matudana 3 

Lepanthes mittelstaedtii 3 

Lepanthes quetzalensis 3 

Lepanthes tactiquense 2 

Malaxis maianthemifolia 3 

Pachyphyllum hispidulum 3 

Pleurothallis matudana 3 

Ponera pellita 3 

Ponera juncifolia 3 

Prosthechea pseudopygmaea 3 

Prosthechea varicosa 3 

Rhynchostele cordata 3 

Rhynchostele stellata 3 

Stelis aeolica 3 

Stelis jalapensis 3 

Stelis megachlamys 3 

Stelis ornata 3 

Stenorrhynchos speciosum 3 

Categoría 1: Especies que se encuentran en peligro de extinción. 

Categoría 2. Especies de distribución restringida a un solo tipo 

de hábitat (endémicas). Categoría 3: Especies que si bien en 

la actualidad no se encuentran en peligro de extinción, podrían 

llegar a estarlo si no se regula su aprovechamiento. 



Jardín Botánico de la Universidad de San Carlos de 

Guatemala. Se recolectaron 75 especímenes de 46 

especies determinadas según variabilidad de la flor 

del espécimen.Se observó la diversidad polimórfica 

de especies como Camaridium cucullatum, Lepanthes 

matudana y Rhynchostele stellata. 

Se encontró convivencia entre las especies de 

Lepanthes fratercula con L. matudana y L. quetzalensis 

con L. tactiquensis. Los descriptores y fotografías que 

literatura Citada 


se presentan en esta investigación se constituyen en 

una base de datos para ayudar a la identificación de las 

especies que se determinaron en la reserva. 

aGradeCimientoS. Los autores quisieran agradecer a 

Sandra Ninet del Cid, Eduardo A. Pérez-García, Daniel 

Jiménez, Rolando Paredes Requena, Rodolfo Hernández y 

Gabriela Samayoa de Hernández por sus observaciones en 

la investigación. 

Ames, O. & D. S. Correll. 1952-1953. Orchid of Guatemala and Belize. Fieldiana 26(1, 2): 1–727. Field Museum of Natural 

History, Chicago. 

Archila, F. 2001. Lepanthes de Guatemala, Monografía del Genero Lepanthes Sw. (Orchidaceae) para Guatemala. 

Guatemala. Editorial Kamar, S.A. 281p. 

Archila, F. 2002. Nuevas especies para la flora orquideológica Guatemalteca. Revista Guatemalensis 5(3): 1-12. 

Consejo Nacional de Áreas Protegidas – CONAP. 2009. Listado de especies amenazadas de Guatemala – LEA - y Listado 

de especies de flora y fauna silvestre CITES de Guatemala. Guatemala: Departamento de Vida Silvestre, Documento 

técnico 67.15 p. 

De La Cruz, J. R. 1982. Clasificación de zonas de vida de Guatemala a nivel de reconocimiento. Guatemala, INAFOR. s.n. 

Dix, M. A. & M. W. Dix. 2000. Orchids o Guatemala. A Revised Annotated Checklist. Monogr. Syst. Bot. Missouri Bot. 

Gard. 79. 

Rodríguez Sandoval, E. R. 2003. Estudio florístico de las comunidades vegetales del bosque comunal de la Aldea Campat, 

San Juan Chamelco, Alta Verapaz. Tesis Ing. Agr., USAC, Facultad de Agronomía. Guatemala, Guatemala. 22 p. 

Hágsater E. & M. A. Soto. 2003. Icones Orchidacearum. Fascicles 5 and 6. Orchids of México. Parts 2 and 3. México D.F., 

México. Instituto Chinoin. 685 p. 

Luer, C. 1990. New Species of Lepanthes from Guatemala. Lindlenyana 5(3): 162-198. 

Mejía Rosero, H., T. Pino Andrade & N. Pino Benítez. 2008. Biodiversidad y Desarrollo. Distribución vertical de orquídeas 

dentro de un bosque húmedo tropical (bh-T). Revista Institucional Universidad Tecnológica del Chocó. 27(2): 175-174. 

Ossenbach Sauter, C., F. Pupulin & R. L. Dressler. 2007. Orquídeas del istmo de Centroamérica. Sabanilla, Montes Oca, 

Costa Rica: Editorial 25 de Mayo. 242 p. 

Solano, R. 1993. El género Stelis Sw. (Orchidaceae: Pleurothallidinae) en México. Orquídea (Méx.) 13 (1-2): 1-11.

LANKESTERIANA 12(3): 191. 2012. 

INDEX OF NEW TAXA AND COMBINATIONS 

PUBLISHED IN LANKESTERIANA, VOL. 10–12 (2010–2012) 1 

Aa aurantiaca D. Trujillo, sp. nov. 11(1): 2–3, 5, fig. 

12. 2011. 

Campylocentrum palominoi M. Kolanowska, O. Pérez 

& E. Parra, sp. nov. 12(1): 9–11, fig. 1. 2012. 

Cyrtochilum betancurii G.Giraldo & Dalström, sp. 

nov. 12(3): 137–142, fig. 1–3. 2012. 

Cyrtochilum carinatum (Königer & Deburghgr.) 

Dalström, comb. nov. 12(3): 149. 2012. 

Cyrtochilum corniculatum Dalström, sp. nov. 12(3): 

147–149, fig. 1, p. 148. 2012. 

Cyrtochilum deburghgraveanum Dalström & S. Ruíz, 

sp. nov. 12(2): 93–95, fig. 1. 2012. 

Cyrtochilum dunstervilleorum G. Morillo & Dalström, 

sp. nov. 12(2): 101–103, fig. 1. 2012. 

Cyrtochilum fernandezii G. Morillo & Dalström, sp. 

nov. 12(2): 103–105, fig. 2. 2012. 

Cyrtochilum ruizii Dalström & Deburghgraeve, sp. 

nov. 12(2): 95–96, 98, fig. 2. 2012. 

Cyrtochilum russellianum Dalström & Ruíz-Pérez, sp. 


Cyrtochilum tricornis Dalström & Ruíz-Pérez, sp. 


Cyrtochilum violaceum Dalström sp. nov. 12(3): 143– 

145, Fig. 1. 2012. 

Cyrtochilum xanthocinctum Dalström & S. Ruíz, sp. 


Encyclia × nizanburyi Pérez–García & Hágsater, hyb. 

nat. nov. 12(1): 1–7, fig. 2, 3C. 2012. 

Epidendrum alieniferum Karremans & Bogarín, sp. 

nov. 12(1): 26–27, fig. 14b, p. 45. 2012. 

Epidendrum × sandiorum Hágsater, Karremans & L. 

Sánchez, nothosp. nov. 12(1): 32–33, fig. 13, p. 

44. 2012. 

Lepanthes erubescens Bogarín, Karremans & Pupulin, 

sp. nov. 12(2): 108–109, fig. 1, 4a. 2012. 

Lepanthes kabebatae Bogarín, Karremans & Mel. 

Fernández, sp. nov. 12(1): 35–36, fig. 7, 14f, 14G, 

p. 45. 2012. 

Lepanthes sandiorum Bogarín & Karremans, sp. nov. 

12(2): 108, 110–111, fig. 2, 4b. 2012. 

Lepanthes sanjuanensis Bogarín & Karremans, sp. 

nov. 12(2): 112–114, fig. 3, 4c. 2012. 

Myrosmodes gymnandra (Rchb.f.) C. Vargas, comb. 

nov. 11(1): 5–6. 2011. 

Myrosmodes inaequalis (Rchb.f.) C. Vargas, comb. 

nov. 11(1): 5, 7–8. 2011. 

Odontoglossum furcatum Dalström sp. nov. 12(3): 

155–159, fig. 1, 2, 3C, 3C1. 2012. 

Odontoglossum galianoi (Dalström & P. Nuñez) 


Odontoglossum koechlinianum (Collantes & G. 

Gerlach) Dalström, comb. nov. 12(1): 57. 2012. 

Odontoglossum mixturum (Dalström & Sönnemark) 


Odontoglossum peruvianum (Schltr.) Dalström, comb. 

nov. 12(1): 58–59. 2012. 

Odontoglossum vulcanicum (Rchb.f.) Dalström, 

comb. nov. 12(1): 59. 2012. 

Ponthieva hermiliae L.Valenzuela, sp. nov. 12(3): 

161–164, fig. 1–2. 2012. 

Teagueia barbeliana L. Jost & A. Shepard, sp. nov. 

11(1): 11–12, fig. 1. 2011. 

Teagueia puroana L. Jost & A. Shepard, sp. nov. 11(1): 

11, 13–14, fig. 2. 2011. 

Telipogon amoanus Bogarín, sp. nov. 12(2): 115–119, 

fig. 1. 2012. 

1 A cumulative index of new taxa and combinations appeared in Lankesteriana, vol. 1–9, was published in Lankesteriana 

10(1): 49-59.

LANKESTERIANA 12(3): 193–194. 2012. 

REVIEWERS OF THE MANUSCRIPTS 

SUBMITTED TO LANKESTERIANA, VOL. 10–12 

The Editor-in-Chief, Managing Editor, Editorial Committee, Editorial Board and Editorial staff of 

lankeSteriana acknowledge the reviewers listed below for their willing cooperation. It is greatly appreciated 

that they have generously invested their time and competence in providing valuable comments and advice, for 

the benefits of the authors, the editorial staff, and the readers of lankeSteriana. 

James d. aCkerman, Department of Biology and Center 

for Applied Tropical Ecology and Conservation, 

University of Puerto Rico, San Juan, PR, U.S.A. 

Joseph arditti, Developmental & Cell Biology School 

of Biological Sciences, University of California, 

Irvine, U.S.A. 

Rafael arévalo burbano, University Of Wisconsin, 

Madison, U.S.A. 

Manfred ayaSSe, Institute of Experimental Ecology, 

University of Ulm, Ulm, Germany. 

Cássio van den berG, Univ. Estadual de Feira de 

Santana, Feira de Santana, Brazil. 

Mario a. blanCo, Biology School, University of Costa 

Rica. 

Diego boGarín, Lankester Botanical Garden, 

University of Costa Rica. 

Germán Carnevali, Centro de Investigaciones 

Científicas de Yucatán, México. 

Mark w. ChaSe, Jodrell Laboratory, Royal Botanic 

Gardens, Kew, U.K. 

Benjamin J. Crain, Department of Biology, University 

of Puerto Rico–Rio Piedras, San Juan, Puerto Rico. 

Phillp J. Cribb, Royal Botanic Gardens, Kew, U.K. 

Stig dalStröm, Lankester Botanical Garden, 

University of Costa Rica, and National 

Biodiversity Centre, Serbithang, Bhutan. 

Robert l. dreSSler, Lankester Botanical Garden, 


Melania fernández, Lankester Botanical Garden, 


Kanchi N. Gandhi, Harvard University Herbaria, 

Harvard University, Cambridge, MA, U.S.A. 

Günter GerlaCh, Botanischer Garten München– 

Nymphenburg, Münich, Germany. 

Alberto Gómez Gutiérrez, Pontificia Universidad 

Javeriana, Bogotá, Colombia. 

Barbara Gravendeel, Naturalis Biodiversity Center – 

NHN Leiden University, The Netherlands. 

Olaf GruSS, In der Au 48, Grassau, Germany. 

Eric háGSater, Herbario AMO, México D.F., México. 

Wesley e. hiGGinS, The American Orchid Society, 

West Palm Beach, U.S.A. 

Rudolf Jenny, Jany Renz Herbarium, University of 

Basel, Switzerland. 

Víctor Jiménez, Centro de Investigación en Granos y 

Semillas, University of Costa Rica. 

Ernesto muJiCa, Centro de Investigaciones y Servicios 

Ambientales ECovida, Pinar del Rio, Cuba. 

Pedro ortiz valdivieSo†, Pontificia Universidad 

Javeriana, Bogotá, Colombia. 

Carlos oSSenbaCh, Orquideario 24 de mayo, Sabanillas 

de Montes de Oca, Costa Rica. 

Joel Tupac otero oSPina, Universidad Nacional de 

Colombia. 

Alec m. PridGeon, Sainsbury Orchid Fellow, Royal 

Botanic Gardens, Kew, U.K. 

David a. robertS, Durrell Institute of Conservation 

and Ecology, University of Kent, U.K. 

Gustavo A. romero–González, Harvard University 

Herbaria, Harvard University, Cambridge, 

Massachusetts, U.S.A. 

Gerardo A. Salazar Chávez, Instituto de Biología, 

Universidad Nacional Autónoma de México.

194 

Luis SánChez Saldaña, Herbario AMO, México D.F., 

México. 

Jyotsna Sharma, Department of Plant and Soil Science, 

Texas Tech University, Lubbock, U.S.A. 

Rodrigo B. SinGer, Depto Botânica–Instituto de 

Biociências, Universidade Federal do Rio Grande 

do Sul, Porto Alegre, Brasil. 

Christina M. Smith, Lankester Botanical Garden, 


Raymond tremblay, Department of Biology, 

University of Puerto Rico – Río Piedras, PR, 

U.S.A. 

LANKESTERIANA 


Ernst vitek, Naturhistorisches Museum, Wien, 

Austria. 

Jorge warner, Lankester Botanical Garden, University 

of Costa Rica. 

W. Mark whitten, Florida Museum of Natural 

History, University of Florida, Gainesville, FL, 

U.S.A. 

Gerhard zotz, Institute of Biology and Environmental 

Sciences, University Oldenburg, Germany, and 

Smithsonian Tropical Research Institute, Panama.

VOL. 12, No. 3 - lankesteriana.org

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